Чувствительность к антисептикам биоплёночных форм Staphylococcus aureus и Pseudomonas aeruginosa, выделенных из ожоговых ран | КМАХ

Чувствительность к антисептикам биоплёночных форм Staphylococcus aureus и Pseudomonas aeruginosa, выделенных из ожоговых ран

Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2018; 20(3):249-256

​ Андреева С.В., Бахарева Л.И., Нохрин Д.Ю., Титова М.В., Хайдаршина Н.Э., Бурмистрова А.Л.
10.36488/cmac.2018.3.249-256
S. aureus P. aeruginosa ожоговые раны биоплёнки антисептики резистентность
Раздел
Опыт работы
Тип
Журнальная статья
Публикация
Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2018; 20(3):249-256

Аннотация

В статье представлены данные по чувствительности к антисептикам антибиотико­резистентных изолятов S. aureus и P. aeruginosa, выделенных из ожоговых ран, клетки которых находились в составе одновидовых и двухвидовых биоплёнок различной степени (24- и 48-часовой) зрелости. Исследования показали, что S. aureus и P. aeruginosa в составе одновидовых и двухвидовых биоплёнок были чувствительны к препаратам «Пронтосан», «Бетадин» и «Хлорофиллипт» и устойчивы к препаратам «Мирамистин» и «Хлоргексидин». Бактерицидный эффект у всех исследованных антисептиков достигался при концентрациях, в 1,64 раза превышавших таковые, при которых наблюдался бактериостатический эффект. По мере созревания биоплёнки отмечалось двукратное увеличение резистентности к антисептикам входящих в её состав бактерий.

Андреева Светлана Владимировна

ФГБОУ ВО «Челябинский государственный университет», Челябинск, Россия

Бахарева Л.И.

ФГБОУ ВО «Челябинский государственный университет», Челябинск, Россия
МБУЗ «Городская клиническая больница № 6», Челябинск, Россия

Нохрин Д.Ю.

ФГБОУ ВО «Челябинский государственный университет», Челябинск, Россия

Титова М.В.

ФГБОУ ВО «Челябинский государственный университет», Челябинск, Россия

Хайдаршина Н.Э.

ФГБОУ ВО «Челябинский государственный университет», Челябинск, Россия

Бурмистрова А.Л.

ФГБОУ ВО «Челябинский государственный университет», Челябинск, Россия

  • 1. Stoodley P., Sauer K., Davies D.G., Costerton J.W. Biofilms as complex differentiated communities. Annu Rev Microbiol. 2002;56:187-209.
  • 2. Davey M.E., O’Toole G.A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics. Microbiol Mol Biol Rev. 2000;64:847-867.
  • 3. Flemming H.C., Wingender J. The biofilm matrix. Nat Rev Microbiol. 2010;8(9):623-633.
  • 4. Smirnova T.A., Didenko L.V., Romanova Y.M., Azizbekyan R.R. Structural and functional characteristics of bacterial biofilms. Mikrobiologiya. 2010;79(4):413-423. Russian. (Смирнова Т.А., Диденко Л.В., Азизбекян Р.Р., Романова Ю.М. Структурно-функциональная характеристика бактериальных биоплёнок. Микробиология. 2010;79(4):435-446.).
  • 5. Vinnik Yu.S., Teplyakova O.V., Peryanova O.V., Onzul E.V., Kozlov V.V. Significance of film-forming ability of Staphylococcus cultures in a choice of drainage polymer and local antiseptics in infected pancreonecrosis. Vestnik jeksperimental’noj i klinicheskoj hirurgii. 2011;4(4):666-670. Russian. (Винник Ю.С., Теплякова О.В., Перьянова О.В., Онзуль Е.В., Козлов В.В. Значение пленкообразующей способности культур стафилококков в выборе дренажного полимера и местных антисептиков при инфицированном панкреонекрозе. Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2011;4(4):666-670.).
  • 6. Lyamin A.V., Botkin E.A., Zhestkov A.V. Medical Problems Associated with Bacterial Biofilms. Klinicheskaja mikrobiologija i antimikrobnaja himioterapija. 2012;14(4):268-275. Russian. (Лямин А.В., Боткин Е.А., Жестков А.В. Проблемы в медицине, связанные с бактериальными плёнками. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2012;14(4):268-275.).
  • 7. Chebotar I.V., Mayansky А.N., Konchakova Е.D., Lazareva А.V., Chistyakova V.P. Antimicrobial Resistance of Bacteria in Biofilms. Klinicheskaja mikrobiologija i antimikrobnaja himioterapija. 2012;14(1):51-5
  • 8. Russian. (Чеботарь И.В., Маянский А.Н., Кончакова Е.Д., Лазарева А.В., Чистякова В.П. Антибиотикорезистентность биоплёночных бактерий. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2012;14(1):51-58.). 8. Rickard A.H., Colacino K.R., Manton K.M., et al. Production of cellcell signaling molecules by bacteria isolated from human chronic wounds. J Appl Microbiol. 2009;108(5):1509-1522.
  • 9. Andreeva S.V., Bahareva L.I., Nohrin D.Ju. Species composition of microflora of burn wounds. Vestnik Cheljabinskogo gosudarstvennogo universiteta. 2013;7(298):58-59. Russian. (Андреева С.В., Бахарева Л.И., Нохрин Д.Ю. Видовой состав микрофлоры ожоговых ран. Вестник Челябинского государственного университета. 2013;7(298):58-59.).
  • 10. Cooper R. Biofilms and wounds: much ado about nothing? Wounds UK. 2010;6(4):84-90.
  • 11. Hussien I.A., Habib K.A., Jassim K.A. Bacterial Colonization of Burn Wounds. Baghdad Sci J. 2012;9(4):623-631.
  • 12. Keen E.F., Robinson B.J., Hospenthal D.R., et al. Incidence and bacteriology of burn infections at a military burn center. Burns. 2010;36:461-468.
  • 13. Azimi L., Motevallian A., Ebrahimzadeh Namvar A., Asghari B., Lari A.R. Nosocomial Infections in Burned Patients in Motahari Hospital, Tehran, Iran. Dermatol Res Pract. 2011;2011:436952.
  • 14. Akiyama H., Huh W.K., Yamasaki O., Oono T., Iwatsuki K. Confocal laser scanning microscopic observation of glycocalyx production by Staphylococcus aureus in mouse skin: does S. aureus generally produce a biofilm on damaged skin? Br J Dermatol. 2002;147:879885.
  • 15. Serralta V.W., Harrison-Balestra C., Cazzaniga A.L., Davis S.C., Mertz P.M. Lifestyles of bacteria in wounds: presence of biofilms? Wounds. 2001;13(1):29-34.
  • 16. Akiyama H., Ueda M., Kanazaki H., Tada J., Arata J. Biofilm formation of Staphylococcus aureus strains isolated from impetigo and furuncle: role of fibrinogen and fibrin. J Dermatol Sci. 1997;16:2-10.
  • 17. Harrison-Balestra C., Cazzaniga A.L., Davis S.C., Mertz P.M. A wound-isolated Pseudomonas aeruginosa grows a biofilm in vitro within 10 hours and is visualised by light microscopy. Dermatol Surg. 2003;29(6):631-635.
  • 18. James G.A., Swogger E., Wolcott R., et al. Biofilms in chronic wounds. Wound Repair Regen. 2008;16(1):37-44.
  • 19. Dietrich L.E., Price-Whelan A., Petersen A., Whiteley M., Newman D.K. The phenazine pyocyanin is a terminal signaling factor in the quorum-sensing network of Pseudomonas aeruginosa. Mol Microbiol. 2006;61(5):1308-1321.
  • 20. Gilbert P., Maira-Litran T., McBain A.J., Rickard A.H., Whyte F.W. The physiology and collective recalcitrance of microbial biofilm communities. Adv Microb Physiol. 2002;46:202-256.
  • 21. Bjarnsholt T., Kirketerp-Mоller K., Jensen P.О., et al. Why chronic wounds fail to heal: a new hypothesis. Wound Rep Regen. 2008;16(1):2-10.
  • 22. Wolcott R.D., Rhoads D.D., Dowd S.E. Biofilms and chronic wound inflammation. J Wound Care. 2008;17(8):333-341.
  • 23. Wolcott R.D., Dowd S.E. The role of biofilms: are we hitting the right target? Plast Reconstr Surg. 2011;127(1):28-37.
  • 24. Kim M.H. Nanoparticle-based therapies for wound biofilm infection: opportunities and challenges. IEEE Trans Nanobioscience. 2016;15(3):294-304.
  • 25. Ahtjamova N.E. New approaches in the treatment of purulentinflammatory processes of the skin and subcutaneous tissue. Russkij medicinskij zhurnal. 2016;(8):508-510. Russian. (Ахтямова Н.Е. Новые подходы в лечении гнойно-воспалительных процессов кожи и подкожной клетчатки. Русский медицинский журнал. 2016;(8):508-510.).
  • 26. Hanenko O.N., Tonko O.V., Levshina N.N., et al. Resistance to antiseptics of staphylococci isolated from burn wounds. Prevention and treatment of hospital infections, resistance of microorganisms to chemotherapy. Proceedings of the republican scientific-practical conference. Minsk, 2006. p. 208-211. Russian. (Ханенко О.Н., Тонко О.В., Левшина Н.Н. и соавт. Резистентность к антисептикам стафилококков, изолированных из ожоговых ран. Профилактика и лечение госпитальных инфекций, резистентность микроорганизмов к химиопрепаратам. Материалы республиканской научно-практической конференции. Минск, 2006. с. 208-211.).
  • 27. Sheldon A.T. Jr. Antiseptic «Resistance»: Real or Perceived Threat? Clin Infect Dis. 2005;40(11):1650-1656.
  • 28. Encheva Yu.A., Kuznetsova M.V., Rubtsova E.A., Afanasievskaya E.V., Samartsev V.A. Chlorhexidine and “Prontosan” effect on biofilm formed by Staphylococcus aureus (in vitro study). Biologija i jeksperimental’naja medicina. 2015;XXXII(1):84-91. Russian. (Еньчева Ю.А. Кузнецова М.В., Рубцова Е.А., Афанасьевская Е.В., Самарцев В.А. Влияние хлоргексидина и «Пронтосана» на биоплёнку, сформированную Staphylococcus aureus (исследование in vitro). Биология и экспериментальная медицина. 2015;XXXII(1):84-91.).
  • 29. Yarets Yu., Shauchenka N. A new method for the bacterial biofilms analysis in medicine. Nauka i innovacii. 2016;11(165):68-72. Russian. (Ярец Ю., Шевченко Н. Новый метод анализа бактериальной биоплёнки. Наука и инновации. 2016;11(165):68-72.).
  • 30. Elias S., Banin E. Multi-species biofilms: living with friendly neighbors. FEMS Microbiol Rev. 2012;(36):990-1004.
  • 31. Krasilnikov A.P. Guide on antiseptics. Minsk: Vyshjejshaja shkola, 1995. 368 p. Russian. (Красильников А.П. Справочник по антисептике. Минск: Вышэйшая школа, 1995. 368 с.).
  • 32. Methodical guidelines on the rapid determination of resistance of bacteria to disinfectants #1100-27-0-117. Russian. (Методические рекомендации по ускоренному определению устойчивости бактерий к дезинфекционным средствам №1100-27-0-117).
  • 33. Andreeva S.V., Bahareva L.I., Burmistrova A.L. Method for evaluating the effectiveness of antimicrobial action of antiseptics on bacteria existing in the form of biofilms. Patent of Russian Federation #2603100, 2016. Russian. (Андреева С.В., Бахарева Л.И., Бурмистрова А.Л. Способ оценки эффективности антимикробного воздействия антисептиков на бактерии, существующие в форме биоплёнки. Патент РФ № 2603100, 2016.).
  • 34. Jarvis B. Statistical Aspects of the Microbiological Examination of Foods, Second Edition. London: Academic Press, 2008.
  • 35. Sokal R.R., Rohlf F.J. Biometry: the principles and practice of statistics in biological research. NY: Freeman and Co, 1995. 887 p.
  • 36. Lang T.A., Secic M. How to Report Statistics in Medicine: Annotated Guidelines for Authors, Editors, and Reviewers, 2nd edition. Philadelphia: American College of Physicians. 2006. 490 p.
  • 37. Whiteley M., Bangera M.G., Bumgarner R.E., et al. Gene expression in Pseudomonas aeruginosa biofilms. Nature. 2001;413:860-864.
  • 38. Tchebotar I.V., Mayanskiy A.N., Mayanskiy N.A. Matrix of microbial biofilms. Klinicheskaja mikrobiologija i antimikrobnaja himioterapija. 2016;18(1):9-19. Russian. (Чеботарь И.В., Маянский А.Н., Маянский Н.А. Матрикс микробных биоплёнок. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2016;18(1):9-19.).
  • 39. Hall-Stoodley L., Stoodley P. Evolving concepts in biofilm infections. Cell Microbiol. 2009;11(7):1034-1043.
  • 40. Miller M.B., Bassler B.L. Quorum sensing in bacteria. Annu Rev Microbiol. 2001;55:165-199.
  • 41. Leriche V., Briandet R., Carpentier B. Ecology of mixed biofilms subjected daily to a chlorinated alkaline solution: spatial distribution of bacterial species suggests a protective effect of one species to another. Environ Microbiol. 2003;5:64-71.
  • 42. Al-Bakri A.G., Gilbert P., Allison D.G. Influence of gentamicin and tobramycin on binary biofilm formation by co-cultures of Burkholderia cepacia and Pseudomonas aeruginosa. J Basic Microbiol. 2005;45:392-396.
  • 43. Burmolle M., Webb J.S., Rao D., et al. Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies biofilms. Appl Environ Microbiol. 2006;72:3916-3923.
  • 44. Kara D., Luppens S.B., Cate J.M. Differences between single- and dual-species biofilms of Streptococcus mutans and Veillonella parvulain growth, acidogenicity and susceptibility to chlorhexidine. Eur J Oral Sci. 2006;114:58-63.
Просмотров
0 Аннотация
0 PDF
0 Цитирования
Поделились