Распространенность и характеристика БЛРС-продуцирующих штаммов Salmonella enterica, циркулирующих на территории России (2016–2020 гг.) | КМАХ

Распространенность и характеристика БЛРС-продуцирующих штаммов Salmonella enterica, циркулирующих на территории России (2016–2020 гг.)

Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2022; 24(3):236-247

​ Павлова А.С., Егорова А.Е., Крутова Н.Е., Саенко С.С., Михайлова Ю.В., Гусева А.Н., Чеботарь И.В., Подколзин А.Т., Кулешов К.В., Акимкин В.Г.
10.36488/cmac.2022.3.236-247
Salmonella enterica БЛРС антибиотикорезистентность гены резистентности
Раздел
Антибиотикорезистентность
Тип
Оригинальная статья
Публикация
Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2022; 24(3):236-247

Цель.

Проанализировать частоту встречаемости и определить генетические детерминанты резистентности изолятов нетифоидных сальмонелл (НТС), вырабатывающих бета-лактамазы расширенного спектра (БЛРС), выделенных на территории России в период с 2016 по 2020 г.

Материалы и методы.

Изоляты сальмонелл, подозрительные на продукцию БЛРС, были отобраны в ходе микробиологического мониторинга на базе Всероссийского референс-центра по мониторингу за сальмонеллезами. Оценку фенотипической резистентности проводили методом серийных разведений на планшетах G-I и G-II Mikrolatest®SensiLaTest MIC и методом «двойных дисков». Полногеномное секвенирование осуществляли на платформе NextSeq (Illumina, США) с последующей сборкой геномов de novo (SPAdes 3.15.4), поиском плазмид (MOB-suite v3.0.0) и генов резистентности (AMRFinderPlus v3.10.40).

Результаты.

Из 1792 изолятов НТС 22 штамма содержали bla-гены молекулярных классов А и D (blaTEM, blaCTX-M, blaSHV, blaOXA), один штамм – AmpC (blaCMY-2) и три штамма комбинацию БЛРС класса А и AmpC (blaTEM, blaCMY-2, blaDHA). Частота встречаемости БЛРС-продуцирующих сальмонелл составила 1,3%, продуцентов AmpC – 0,2%. Штаммы также характеризовались резистентностью к другим не бета-лактамным антибиотикам, что подтверждено присутствием соответствующих генов резистентности. У исследуемых изолятов было выявлено 6 различных типов плазмид (IncI, IncFIB, IncC, IncHI2A, IncL/M и IncX1). Для 17 штаммов удалось подтвердить локализацию генов резистентности на плазмидах определенного типа.

Выводы.

Частота встречаемости штаммов сальмонелл, продуцирующих БЛРС и AmpC, составила 1,45%, при этом источниками выделения были спорадические случаи заболевания человека, а также продукты питания и объекты окружающей среды. Факт обнаружения подобных штаммов среди различных серотипов НТС и широкий спектр источников изоляции подтверждает актуальность мониторинга за антибиотикорезистентностью штаммов сальмонелл в дальнейшем.

Анастасия Сергеевна Павлова

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Егорова А.Е.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Крутова Н.Е.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Саенко С.С.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Михайлова Ю.В.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Гусева А.Н.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Чеботарь Игорь Викторович

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия

Подколзин А.Т.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Кулешов К.В.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

Акимкин В.Г.

ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия

  • 1. Majowicz S.E., Musto J., Scallan E., Angulo F.J., Kirk M., O’Brien S.J., et al. The global burden of nontyphoidal Salmonella gastroenteritis. Clin Infect Dis. 2010;50(6):882889. DOI: 10.1086/650733
  • 2. Kuleshov K.V., Pavlova A.S., Shedko E.D., Mikhaylova Y.V., Margos G., Hepner S., et al. Mobile colistin resistance genetic determinants of non-typhoid Salmonella enterica isolates from Russia. Microorganisms. 2021;9(12):2515. DOI: 10.3390/microorganisms9122515
  • 3. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Surveillance System Overview: National Salmonella Surveillance. 2011. Available at: www.cdc.gov/nationalsurveillance/PDFs/NationalSalmSurveillOverview_508.pdf. Accessed August 2022.
  • 4. Mechesso A.F., Moon D.C., Kim S.J., Song H.J., Kang H.Y., Na S.H., et al. Nationwide surveillance on serotype distribution and antimicrobial resistance profiles of non-typhoidal Salmonella serovars isolated from food-producing animals in South Korea. Int J Food Microbiol. 2020;335:108893. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2020.108893
  • 5. World Health Organization. Molecular methods for antimicrobial resistance (AMR) diagnostics to enhance the Global Antimicrobial Resistance Surveillance System. 2019. Available at: www.who.int/publications/i/item/WHO-WSI-AMR-2019.1. Accessed August 2022.
  • 6. Stratchounski L.S. Extended-spectrum β-lactamases – rapidly spreading and underestimated problem. Kliniceskaa mikrobiologia i antimikrobnaa himioterapia. 2005;7(1):9296. Russian. (Страчунский Л.С. β-лактамазы расширенного спектра – быстро растущая и плохо осознаваемая угроза. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2005;7(1):92-96.)
  • 7. Pitout J.D.D. Infections with extended-spectrum β-lactamaseproducing Enterobacteriaceae. Drugs. 2010;70(3):313333. DOI: 10.2165/11533040-000000000-00000
  • 8. Strahilevitz J., Jacoby G.A., Hooper D.C., Robicsek A. Plasmid-mediated quinolone resistance: a multifaceted threat. Clin Microbiol Rev. 2009;22(4):664-689. DOI: 10.1128/CMR.00016-09
  • 9. Weill F.X., Demartin M., Tandeé D., Espieé E., Rakotoarivony I., Grimont P.A. SHV-12-like extended-spectrumβ-lactamase-producing strains of Salmonella enterica serotypes Babelsberg and Enteritidis isolated in France among infants adopted from Mali. J Clin Microbiol. 2004;42(6):24322437. DOI: 10.1128/JCM.42.6.2432-2437.2004
  • 10. Su L.H., Wu T.L., Chia J.H., Chu C., Kuo A.J., Chiu C.H. Increasing ceftriaxone resistance in Salmonella isolates from a university hospital in Taiwan. J Antimicrob Chemother. 2005;55(6):846-852. DOI: 10.1093/jac/dki116
  • 11. Mataseje F.L., Xiao J., Kost S., Ng L.K., Doré K., Mulvey M.R. Characterization of Canadian cefoxitin-resistant nontyphoidal Salmonella isolates, 2005-06. J Antimicrob Chemother. 2009;64(4):723-730. DOI: 10.1093/jac/dkp249
  • 12. Lobzin Yu.V., Yakushin S.B., Zakharenko S.M. Practice guidelines for the management of infectious diarrhea. Kliniceskaa mikrobiologia i antimikrobnaa himioterapia. 2001;3(2):163-182. Russian. (Лобзин Ю.В., Якушин С.Б., Захаренко С.М. Практические рекомендации по ведению пациентов с инфекционной диареей. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001;3(2):163-182.)
  • 13. Ivanov A.S. Antimicrobial resistance and therapy of Salmonella infections. Kliniceskaa mikrobiologia i antimikrobnaa himioterapia. 2009;11(4):305-326. Russian. (Иванов А.С. Современные представления об антибиотикорезистентности и антибактериальной терапии сальмонеллезов. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2009;11(4):305-326.)
  • 14. Healy J.M., Bruce B.B. Salmonellosis (Nontyphoidal). In: CDC Yellow Book; 2020. Chapter 4: Travel-Related Infectious Diseases. Available at: https://wwwnc.cdc.gov/travel/yellowbook/2020/travel-related-infectiousdiseases/salmonellosis-nontyphoidal. Accessed August 2022.
  • 15. Stoycheva M.V., Murdjeva M.A. Antimicrobial therapy of salmonellosis – current state and perspectives. Folia Med (Plovdiv). 2006;48(1):5-10. PMID: 16918048.
  • 16. Chen H.M., Wang Y., Su L.H., Chiu C.H. Nontyphoid Salmonella infection: microbiology, clinical features, and antimicrobial therapy. Pediatr Neonatol. 2013;54(3):147152. DOI: 10.1016/j.pedneo.2013.01.010
  • 17. McDermott P.F. Antimicrobial resistance in nontyphoidal Salmonellae. In: Antimicrobial resistance in bacteria of animal origin; 2005. Chapter 17. DOI: 10.1128/9781555817534.ch17
  • 18. Arlet G., Barrett T.J., Butaye P., Cloeckaert A., Mulvey M.R., White D.G. Salmonella resistant to extended-spectrum cephalosporins: prevalence and epidemiology. Microbes Infect. 2006;8(7):1945-1954. DOI: 10.1016/j.micinf.2005.12.029
  • 19. Noda T., Murakami K., Etoh Y., Okamoto F., Yatsuyanagi J., Sera N., et al. Increase in resistance to extended-spectrum cephalosporins in Salmonella isolated from retail chicken products in Japan. PLoS One. 2015;10(2):e0116927. DOI: 10.1371/journal.pone.0116927
  • 20. Kim K.G., Jung J., Shin J.H., Park H.J., Kim M.J., Seo J.J., et al. Trends in ESBLs and PABLs among enteric Salmonella isolates from children in Gwangju, Korea: 2014-2018. J Microbiol Immunol Infect. 2022;55(2):199-206. DOI: 10.1016/j.jmii.2021.09.004
  • 21. European Food Safety Authority (EFSA), European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). The European Union Summary Report on Antimicrobial Resistance in zoonotic and indicator bacteria from humans, animals and food in 2018/2019. EFSA J. 2021;19(4):e06490. DOI: 10.2903/j.efsa.2021.6490
  • 22. Kozyreva V.K., Edelstein M.V., Tapalskiy D.V., Azyzov I.S., Romanov A.V., Kozlov R.S. Clonal dissemination of CTX-M5-producing nosocomial strains of Salmonella Typhimurium in Russia, Belarus, and Kazakhstan. Kliniceskaa mikrobiologia i antimikrobnaa himioterapia. 2012;14(1):38-50. Russian. (Козырева В.К., Эйдельштейн М.В., Тапальский Д.В., Азизов И.С., Романов А.В., Козлов Р.С. Клональное распространение CTX-M-5-продуцирующих нозокомиальных штаммов Salmonella Typhimurium в России, Беларуси и Казахстане. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2012;14(1):38-50.)
  • 23. Edelstein M., Pimkin M., Dmitrachenko T., Semenov V., Kozlova N., Gladin D., et al. Multiple outbreaks of nosocomial salmonellosis in Russia and Belarus caused by a single clone of Salmonella enterica serovar Typhimurium producing an extended-spectrum β-lactamase. Antimicrob Agents Chemother. 2004;48(8):2808-2815. DOI: 10.1128/AAC.48.8.2808-2815.2004
  • 24. Kaftyreva L.A., Egorova S.A., Makarova M.A., Kolosovskaya E.N., Dar'ina M.G. Prevalence and characteristics of ESBL-producing enterobacteria – causative agents of various infectious diseases. Dal'nevostochnyj zhurnal infekcionnoj patologii. 2010;17(17):124-129. Russian. (Кафтырева Л.А., Егорова С.А., Макарова М.А., Колосовская Е.Н., Дарьина М.Г. Распространенность и характеристика БЛРС-продуцирующих энтеробактерий – возбудителей различных инфекционных заболеваний. Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2010;17(17):124-129.)
  • 25. Egorova S.A., Kaftyreva L.A., Suzhaeva L.V., Zabrovskaia A.V., Voitenkova E.V., Matveeva Z.N., et al. Antimicrobial resistance and clinical significant resistance mechanisms of Salmonella isolated in 2014-2018 in St. Petersburg, Russia. Klinicheskaja laboratornaja diagnostika. 2019;64(10):620-626. Russian. (Егорова С.А., Кафтырева Л.А., Сужаева Л.В., Забровская А.В., Войтенкова Е.В., Матвеева З.Н. и соавт. Устойчивость к антимикробным препаратам и клинически значимые механизмы резистентности штаммов Salmonella, выделенных в 2014-2018 гг. в Санкт-Петербурге, Россия. Клиническая лабораторная диагностика. 2019;64(10):620-626.) DOI: 10.18821/0869-20842019-64-10-620-626
  • 26. Egorova S., Kaftyreva L., Grimont P.A.D., Weill F.X. Prevalence and characterization of extended-spectrum cephalosporin-resistant nontyphoidal Salmonella isolates in adults in Saint Petersburg, Russia (2002-2005). Microb Drug Resist. 2007;13(2):102-107. DOI: 10.1089/mdr.2007.712
  • 27. Egorova A., Mikhaylova Y., Saenko S., Tyumentseva M., Tyumentsev A., Karbyshev K., et al. Comparative wholegenome analysis of Russian foodborne multidrugresistant Salmonella Infantis isolates. Microorganisms. 2022;10(1):89. DOI: 10.3390/microorganisms10010089
  • 28. The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. EUCAST guidelines for detection of resistance mechanisms and specific resistances of clinical and/or epidemiological importance. Version 2.0. 2017. Available at: www.eucast.org/resistance_mechanisms/. Accessed August 2022.
  • 29. Bankevich A., Nurk S., Antipov D., Gurevich A.A., Dvorkin M., Kulikov A.S., et al. SPAdes: a new genome assembly algorithm and its applications to single-cell sequencing. J Comput Biol. 2012;19(5):455-477. DOI: 10.1089/cmb.2012.0021
  • 30. Robertson J., Nash J.H.E. MOB-suite: software tools for clustering, reconstruction and typing of plasmids from draft assemblies. Microb Genom. 2018;4(8);e000206. DOI: 10.1099/mgen.0.000206
  • 31. Feldgarden M., Brover V., Gonzalez-Escalona N., Frye J.G., Haendiges J., Haft D.H., et al. AMRFinderPlus and the Reference Gene Catalog facilitate examination of the genomic links among antimicrobial resistance, stress response, and virulence. Sci Rep. 2021;11(1):12728. DOI: 10.1038/s41598-021-91456-0
  • 32. Bush K., Jacoby G.A. Updated functional classification of β-lactamases. Antimicrob Agents Chemother. 2010;54(3):969-976. DOI: 10.1128/AAC.01009-09
  • 33. Bharat A., Mataseje L., Parmley E.J., Avery B.P., Cox G., Carson C.A., et al. One health genomic analysis of extendedspectrum β-lactamase-producing Salmonella enterica, Canada, 2012-2016. Emerg Infect Dis. 2022;28(7):14101420. DOI: 10.3201/eid2807.211528
  • 34. Wang W., Zhao L., Hu Y., Dottorini T., Fanning S., Xu J., Li F. Epidemiological study on prevalence, serovar diversity, multidrug resistance, and CTX-M-type extended-spectrum β-lactamases of Salmonella spp. from patients with diarrhea, food of animal origin, and pets in several provinces of China. Antimicrob Agents Chemother. 2020;64(7):e00092-20. DOI: 10.1128/AAC.00092-20
  • 35. U.S. Food and Drug Administration (FDA). 2018 NARMS Update: Integrated Report Summary. Available at: www.fda.gov/animal-veterinary/national-antimicrobial-resistancemonitoring-system/2018-narms-update-integrated-reportsummary. Accessed August 2022.
  • 36. Wasyl D., Hoszowski A. First isolation of ESBL-producing Salmonella and emergence of multiresistant Salmonella Kentucky in turkey in Poland. Food Research International. 2012;45(2):958-961. DOI: 10.1016/j.foodres.2011.07.024
  • 37. Franco A., Leekitcharoenphon P., Feltrin F., Alba P., Cordaro G., Iurescia M., et al. Emergence of a clonal lineage of multidrug-resistant ESBL-producing Salmonella Infantis transmitted from broilers and broiler meat to humans in Italy between 2011 and 2014. PLoS One. 2015;10(12):e0144802. DOI: 10.1371/journal.pone.0144802
  • 38. Tamang M.D., Gurung M., Nam H.M., Moon D.C., Kim S.R., Jang G.C., et al. Prevalence and characterization of Salmonella in pigs from conventional and organic farms and first report of S. serovar 1,4,[5],12:i:- from Korea. Vet Microbiol. 2015;178(1-2):119-124. DOI: 10.1016/j.vetmic.2015.05.005
  • 39. European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). EU protocol for harmonised monitoring of antimicrobial resistance in human Salmonella and Campylobacter. 2016. Available at: www.ecdc.europa.eu/en/publicationsdata/eu-protocol-harmonised-monitoring-antimicrobialresistance-human-salmonella-and-0. Accessed August 2022.
  • 40. World Health Organization. Critically important antimicrobials for human medicine – 5th rev. 2017. Available at: www.who.int/publications/i/item/9789241595742. Accessed August 2022.
  • 41. Bevan E.R., Jones A.M., Hawkey P.M. Global epidemiology of CTX-M β-lactamases: temporal and geographical shifts in genotype. J Antimicrob Chemother. 2017;72(8):21452155. DOI: 10.1093/jac/dkx146
  • 42. Aviv G., Tsyba K., Steck N., Salmon-Divon M., Cornelius A., Rahav G., et al. A unique megaplasmid contributes to stress tolerance and pathogenicity of an emergent Salmonella enterica serovar Infantis strain. Environ Microbiol. 2014;16(4):977-994. DOI: 10.1111/14622920.12351
  • 43. Bogomazova A.N., Gordeeva V.D., Krylova E.V., Soltynskaya I.V., Davydova E.E., Ivanova O.E., et al. Megaplasmid found worldwide confers multiple antimicrobial resistance in Salmonella Infantis of broiler origin in Russia. Int J Food Microbiol. 2020;319:108497. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2019.108497
  • 44. Tate H., Folster J.P., Hsu C.H., Chen J., Hoffmann M., Li C., et al. Comparative analysis of extended spectrum beta-lactamase CTX-M-65-producing Salmonella Infantis isolates from humans, food animals, and retail chickens in the United States. Antimicrob Agents Chemother. 2017;61(7):e00488-17. DOI: 10.1128/AAC.00488-17
  • 45. Hindermann D., Gopinath G., Chase H., Negrete F., Althaus D., Zurfluh K., et al. Salmonella enterica serovar Infantis from food and human infections, Switzerland, 20102015: poultry-related multidrug resistant clones and an emerging ESBL producing clonal lineage. Front Microbiol. 2017;8:1322. DOI: 10.3389/fmicb.2017.01322
  • 46. U.S. Food and Drug Administration (FDA). 2019 NARMS Update: Integrated Report Summary. Available at: www.fda.gov/animal-veterinary/national-antimicrobial-resistancemonitoring-system/2019-narms-update-integrated-reportsummary. Accessed August 2022.
  • 47. European Food Safety Authority (EFSA), European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). The European Union One Health 2020 Zoonoses Report. EFSA Journal. 2021;19(12):e06971. DOI: 10.2903/j.efsa.2021.6971
  • 48. Rozhnova S.S., Kuleshov K.V., Pavlova A.S., Guseva A.N., Kozhakhmetova T.A., Akulova N.K., Podkolzin A.T. Heterogeneity of Salmonella isolates obtained from various sources in Russia 2010-2019. Epidemiology and infectious diseases. 2020;25(1):26-34. Russian. (Рожнова С.Ш., Кулешов К.В., Павлова А.С., Гусева А.Н., Кожахметова Т.А., Акулова Н.К., Подколзин А.Т. Гетерогенность изолятов нетифоидных сальмонелл из различных источников выделения в Российской Федерации в 20102019 гг. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2020;25(1):26-34.) DOI: 10.17816/EID35184
  • 49. Rodrigue D.C., Tauxe R.V., Rowe B. International increase in Salmonella enteritidis: a new pandemic? Epidemiol Infect. 1990;105(1):21-27. DOI: 10.1017/s0950268800047609
  • 50. Christenson J.C. Salmonella infections. Pediatr Rev. 2013;34(9):375-383. DOI: 10.1542/pir.34-9-375
  • 51. Adamczuk M., Zaleski P., Dziewit L., Wolinowska R., Nieckarz M., Wawrzyniak P., et al. Diversity and global distribution of IncL/M plasmids enabling horizontal dissemination of β-lactam resistance genes among the Enterobacteriaceae. BioMed Res Int. 2015;2015:414681. DOI: 10.1155/2015/414681
  • 52. Machado E., Coque T.M., Cantón R., Baquero F., Sousa J.C., Peixe L. Dissemination in Portugal of CTX-M-15-, OXA-1-, and TEM-1-producing Enterobacteriaceae strains containing the aac(6′)-Ib-cr gene, which encodes an aminoglycosideand fluoroquinolone-modifying enzyme. Antimicrob Agents Chemother. 2006;50(9):3220-3221. DOI: 10.1128/AAC.00473-06
  • 53. Barguigua A., El Otmani F., Talmi M., Reguig A., Jamali L., Zerouali K., Timinouni M. Prevalence and genotypic analysis of plasmid-mediated β-lactamases among urinary Klebsiella pneumoniae isolates in Moroccan community. J Antibiot (Tokyo). 2013;66(1):11116. DOI: 10.1038/ja.2012.91
  • 54. Cao C., Niu Q., Chen J., Xu X., Sheng H., Cui S., Liu B., Yang B. Epidemiology and characterization of CTX-M-55type extended-spectrum β-lactamase-producing Salmonella enterica serovar Enteritidis isolated from patients in Shanghai, China. Microorganisms. 2021;9(2):260. DOI: 10.3390/microorganisms9020260
  • 55. Zhang C.Z., Ding X.M., Lin X.L., Sun R.Y., Lu Y.W., Cai R.M., et al. The emergence of chromosomally located blaCTX-M-55 in Salmonella from foodborne animals in China. Front Microbiol. 2019;10:1268. DOI: 10.3389/fmicb.2019.01268
  • 56. Fu Y., Xu X., Zhang L., Xiong Z., Ma Y., Wei Y., et al. Fourth generation cephalosporin resistance among Salmonella enterica serovar Enteritidis isolates in Shanghai, China conferred by blaCTX-M-55 harboring plasmids. Front Microbiol. 2020;11:910. DOI: 10.3389/fmicb.2020.00910
  • 57. Folster J.P., Pecic G., Mccullough A., Rickert R., Whichard J.M. Characterization of blaCMY-encoding plasmids among Salmonella isolated in the United States in 2007. Foodborne Pathog Dis. 2011;8(12):1289-1294. DOI: 10.1089/fpd.2011.0944
  • 58. Martin L.C., Weir E.K., Poppe C., Reid-Smith R.J., Boerlin P. Characterization of blaCMY-2 plasmids in Salmonella and Escherichia coli isolates from food animals in Canada. Appl Environ Microbiol. 2012;78(4):1285-1287. DOI: 10.1128/AEM.06498-11
  • 59. Casarin Penha Filho R.A., Ferreira J.C., Iba Kanashiro A.M., Junior A.B., da Costa Darini A.L. Emergent multidrugresistant nontyphoidal Salmonella serovars isolated from poultry in Brazil coharboring bla CTX-M-2 and qnrB or bla CMY-2 in large plasmids. Diagn Microbiol Infect Dis. 2019;95(1):93-98. DOI: 10.1016/j.diagmicrobio.2019.04.003
Просмотров
0 Аннотация
0 PDF
0 Цитирования
Поделились