Аннотация
Телаванцин (ТЛВ) — новый полусинтетический липогликопептид, активный в отношении грамположительных микроорганизмов, включая метициллиноустойчивые, а также гликопептидоустойчивые штаммы Staphylococcus aureus. Для прогнозирования сравнительной эффективности ТЛВ и ванкомицина (ВАН) исследовали кинетику гибели 2 штаммов S. aureus в условиях моделирования in vitro фармакокинетических профилей при 5-дневном введении антибиотиков человеку (ТЛВ — 1 раз в сутки, ВАН — 2 раза в сутки). Значения моделируемых площадей под фармакокинетической кривой в пределах 24 ч (ПФК24), отнесённых к МПК, составляли от 30-50 до 1700-3400 ч. В диапазоне от 100 до 800 ч отмечено зависимое от концентрации ТЛВ и ВАН снижение исходной численности клеток S. aureus АТСС 43300 и АТСС 700699 (Mu-50). Дальнейшее повышение значений отношения ПФК24/МПК (до 1700 ч для S. aureus АТСС 700699 и до 3400 ч для S. aureus АТСС 43300) не приводило к заметному снижению минимальной численности жизнеспособных клеток. Кумулятивный антистафилококковый эффект ТЛВ и ВАН (площадь фигуры, ограниченной уровнем исходной численности клеток и кривой их гибели — параметр ABBC) был сопоставимым при одинаковых значениях отношения ПФК24/МПК. Вместе с тем, при значениях ПФК24/МПК, близких к терапевтически достижимым (в случае S. aureus ATCC 700699 — 1700 ч для ТЛВ и 100 ч — для ВАН), ТЛВ был эффективнее, чем ВАН. Введение ТЛВ и ВАН в изученных режимах не приводило к селекции устойчивых мутантов S. aureus ATCC 700699. Вместе с тем, при значениях ПФК24/МПК ВАН (но не ТЛВ), равных 60 и 120 ч, отмечена селекция мутантов S. aureus ATCC 43300, устойчивых к 2×МПК и 4×МПК ВАН. Поскольку эффект, выраженный параметром АВВС, более чётко коррелировал со значением ПФК24/МПК, чем другие параметры, он был признан оптимальным для сравнительной оценки фармакодинамических свойств антибиотиков.
-
1.
King A., Phillips I., Kaniga K. Comparative in vitro activity of telavancin (TD-6424), a rapidly bactericidal, concentration-dependent anti-infective with multiple mechanisms of action against Gram-positive bacteria. J Antimicrob Chemother 2004; 53:797-803.
-
2.
Pace J. L., Krause K., Johnston D., et al. In vitro activity of TD-6424 against Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2003; 47:3602-04.
-
3.
Shaw J. P., Seroogy J., Kaniga K., et al. Pharmacokinetics, serum inhibitory and bactericidal activity, and safety of telavancin in healthy subjects. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49:195-201.
-
4.
Higgins D. L., Chang R., Debabov D. V., et al. Telavancin, a multifunctional lipoglycopeptide, disrupts both cell wall synthesis and cell membrane integrity in methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49:1127-34.
-
5.
Reyes N., Skinner R., Kaniga K., et al. Efficacy of telavancin (TD-6424), a rapidly bactericidal lipoglycopeptide with multiple mechanism of action, in a murine model of pneumonia induced by methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2005, 49:4344-6.
-
6.
Madrigal A. G., Basuino L., Chambers H. F. Efficacy of telavancin in a rabbit model of aortic valve endocarditis due to methicillin-resistant Staphylococcus aureus or vancomycin-intermediate Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2005, 49:3163-5.
-
7.
Stuki A., Gerber P., Acosta F., et al. Efficacy of telavancin against penicillin-resistant pneumococci and Staphylococcus aureus in a rabbit meningitis model and determination of kinetic parameters. Antimicrob Agents Chemother 2006, 50:770-3.
-
8.
Reyes N., Skinner R., Benton B. M., et al. Efficacy of telavancin in a murine model of bacteraemia induced by methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J Antimicrob Chemother 2006; 58:462-5.
-
9.
Stryjewski, M. E., O’Riordan W. D., Lau W. K., et al. and the FAST Investigator Group. Telavancin versus standard therapy for treatment of complicated gram-positive skin and soft tissue infections. Clin Infect Dis 2005; 40:1601-7.
-
10.
Stryjewski M. E., Chu V. H., O’Riordan W. D., et al. for the FAST 2 Investigator Group. Telavancin versus standard therapy for treatment of complicated skin and skin structure infections caused by gram-positive bacteria: FAST 2 Study. Antimicrob Agents Chemother 2006; 50:862-7.
-
11.
Attwood R. J. and LaPlante, K. L. Telavancin: A novel lipoglycopeptide antimicrobial agent. Am J Health Syst Pharm 64: 2335-2348. National institute of Health. Comparison of telavancin and vancomycin for hospital-acquired pneumonia due to methicillin-resistant Staphylococcus aureus (ATTAIN 2) 2007.
-
12.
Leuthner K. D., Cheung C. M., Rybak M. J. Comparative activity of the new lipoglycopeptide telavancin in the presence and absence of serum against 50 glycopeptide non-susceptible staphylococci and three vancomycin-resistant Staphylococcus aureus. J Antimicrob Chemother 2006; 58:338-43.
-
13.
Odenholt I., Lowdin E., Cars O. Pharmacodynamic effects of telavancin against methicillin-resistant and methicillinsusceptible Staphylococcus aureus strains in the presence of human albumin or serum and in an in vitro kinetic model. Antimicrob Agents Chemother 2007; 51:3311-6.
-
14.
Lubenko I. Yu., Strukova E. N., Smirnova M. V., et al. Telavancin and vancomycin pharmacodynamics with Staphylococcus aureus in an in vitro dynamic model. J Antimicrob Chemother 2008; 62(5):1065-9.
-
15.
Zhao X., Drlica K. Restricting the selection of antibioticresistant mutants: a general strategy derived from fluoroquinolone studies. Clin Infect Dis 2001; 33:147-6.
-
16.
Winter M. E. Vancomycin, In: Koda-Kimble M, Young L, ed. Basic Clinical Pharmacokinetics. Applied Therapeutics, Inc., Vancouver, WA, 1988; 357-71.
-
17.
Boeckh M., Lode H., Borner K., et al. Pharmacokinetics and serum bactericidal activity of vancomycin alone and in combination with ceftazidime in healthy volunteers. Antimicrob Agents Chemother 1988; 32:92-5.
-
18.
Healy D.P., Polk R.E., Garson M.L., et al. Comparison of steady-state pharmacokinetics of two dosage regimens of vancomycin in normal volunteers. Antimicrob Agents Chemother 1987; 31:393-97.
-
19.
Firsov A. A., Shevchenko A. A., Vostrov S. N., et al. Interand intra-quinolone predictors of antimicrobial effect in an in vitro dynamic model: new insight into a widely used concept. Antimicrob Agents Chemother 1998; 42:659-65.
-
20.
Firsov A. A., Savarino D., Ruble M., et al. Predictors of effect of ampicillin-sulbactam against TEM-1 beta-lactamase-producing Escherichia coli in an in vitro dynamic model: enzyme activity versus MIC. Antimicrob Agents Chemother 1996; 40:734-8.
-
21.
Фирсов А.А., Черных В. М. Фомина И. П. Принципы анализа кривых кинетики антимикробного эффекта в динамических системах, моделирующих фармакокинетические профили антибиотиков. Антибиотики 1987; 2:122-9
-
22.
Smirnova M.V., Lubenko I. Yu., Portnoy Y. A., et al. Concentration-response relationships as a basis for choice of the optimal endpoints of the antimicrobial effect: daptomycin and vancomycin pharmacodynamics with staphylococci in an in vitro dynamic model. Int J Antimicrob Agents 2007; 29:165-9.
-
23.
Firsov A. A., Zinner S. H., Vostrov S. N., et al. AUC/MIC relationships to different endpoints of the antimicrobial effect: multiple-dose in vitro simulations with moxifloxacin and levofloxacin. J Antimicrob Chemother 2002; 50:533-9
-
24.
Miró J. M., García-de-la-Mària C., Armero Y., et al. Efficacy of telavancin in the treatment of experimental endocarditis due to glycopeptide-intermediate Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2007; 51:2373-7.