Лекарственная чувствительность Mycobacterium avium, выделенных у больных микобактериозом с положительным и отрицательным ВИЧ-статусом | КМАХ

Лекарственная чувствительность Mycobacterium avium, выделенных у больных микобактериозом с положительным и отрицательным ВИЧ-статусом

Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2025; 27(2):206-216

​ Панова А.Е., Казюлина А.А., Грачева А.Н., Самойлова А.Г., Васильева И.А.
10.36488/cmac.2025.2.206-216
антибиотикорезистентность Mycobacterium avium антимикробные препараты ВИЧ-инфекция
Раздел
Антибиотикорезистентность
Тип
Оригинальная статья
Публикация
Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2025; 27(2):206-216

Цель.

Сравнительная оценка чувствительности in vitro к антимикробным препаратам M. avium, выделенных у больных микобактериозом с положительным и отрицательным ВИЧ-статусом.

Материалы и методы.

Клинические изоляты M. avium выделены в 2018–2023 гг. из образцов биоматериала 402 взрослых пациентов (≥ 18 лет), 144 штамма были выделены из биоматериала от пациентов с положительным ВИЧ-статусом (ВИЧ+) и 258 изолятов – от пациентов с отрицательным ВИЧ-статусом (ВИЧ-). Исследование чувствительности M. avium проводили к 15 АМП: амикацину, кларитромицину, рифабутину, рифампицину, этамбутолу, стрептомицину, ципрофлоксацину, доксициклину, изониазиду, этионамиду, линезолиду, моксифлоксацину, триметоприму/сульфаметоксазолу, бедаквилину, деламаниду методом микроразведений в бульоне согласно рекомендациям CLSI M24-A2, 2018. Категории чувствительности определяли на основании пограничных значений (ПЗ) минимальных подавляющих концентраций (МПК) в соответствии со стандартами CLSI M24S, 2023. Для амикацина, кларитромицина, линезолида и моксифлоксацина использовали пограничные значения для M. avium complex. Для ципрофлоксацина, доксициклина, рифабутина, рифампицина использовали ПЗ МПК для других медленнорастущих нетуберкулезных микобактерий (НТМ) (M. kansasii и M. marinum) согласно правилам в разделе CLSI M24S, 2023 «Non-species related breakpoints». Для этамбутола, изониазида, стрептомицина, этионамида, бедаквилина, деламанида ПЗ МПК для медленнорастущих НТМ не установлены.

Результаты.

Наиболее высокий уровень чувствительности (> 60%) M. avium у больных МБ ВИЧ+ и МБ ВИЧ- наблюдался к рифабутину (94,4% и 87,6%), амикацину (78,5% и 72,1%), кларитромицину (75,7% и 64,7%), относительно низкий уровень чувствительности (60–40%) – к моксифлоксацину (56,9% и 50,4%), триметоприму/сульфаметоксазолу (43,6% и 52,9%), наиболее низкий уровень чувствительности (< 40%) – к доксициклину (2,1% и 0,4%), линезолиду (14,6% и 14,7%), ципрофлоксацину (14,6% и 15,5%), рифампицину (34,0% и 36,4%). Сравнительный анализ чувствительности M. avium показал, что чувствительных изолятов оказалось статистически достоверно больше у больных МБ ВИЧ+, чем МБ ВИЧ- к: рифабутину (94,4% против 87,6%, р = 0,04), кларитромицину (75,7% против 64,7%, р = 0,03). Устойчивых изолятов M. avium у больных МБ ВИЧ- обнаружено больше, чем у МБ ВИЧ+ к: рифабутину (12,4% против 5,6%, р = 0,04), кларитромицину (19,8% против 9,7%, р = 0,01), моксифлоксацину (29,1% против 18,8%, p = 0,03). Изолятов с промежуточной чувствительностью выявлено больше в группе больных МБ ВИЧ-, чем МБ ВИЧ+ к амикацину (6,3% против 18,6%, p = 0,001). Кроме этого, наблюдались более высокие значения МПК50 в отношении изолятов, выделенных у больных МБ ВИЧ-, чем МБ ВИЧ+ для: амикацина (16 мкг/мл против 8 мкг/мл), кларитромицина (8 мкг/мл против 4 мкг/мл), изониазида (16 мкг/мл против 8 мкг/мл), стрептомицина (32 мкг/мл против 16 мкг/мл). Также наблюдались более высокие значения МПК90 в отношении изолятов, выделенных у больных МБ ВИЧ-, чем МБ ВИЧ+ для: рифабутина (4 мкг/ мл против 2 мкг/мл), амикацина (32 мкг/мл против 16 мкг/мл), кларитромицина (32 мкг/мл против 16 мкг/мл), моксифлоксацина (8 мкг/мл против 4 мкг/мл), доксициклина (256 мкг/мл против 128 мкг/мл), рифампицина (32 мкг/мл против 16 мкг/мл), деламанида (2 мкг/мл против 1 мкг/мл), изониазида (128 мкг/мл против 32 мкг/мл), стрептомицина (128 мкг/мл против 64 мкг/мл).

Выводы.

Уровень активности 9 АМП (кларитромицин, рифампицин, рифабутин, амикацин, стрептомицин, моксифлоксацин, доксициклин, изониазид, деламанид) из 15-ти исследованных АМП оказался ниже в отношении изолятов M. avium, выделенных от больных МБ ВИЧ-, чем в отношении изолятов от больных МБ ВИЧ+. Эти результаты подтверждались статистически достоверными различиями в количестве чувствительных, умеренно-чувствительных и резистентных изолятов и/или значениями МПК50 и/или МПК90, которые были выше в группе МБ ВИЧ-, чем МБ ВИЧ+. Вместе с тем, уровень активности ни одного из 15 исследованных АМП в отношении изолятов, выделенных от больных МБ ВИЧ + не был ниже, чем от больных МБ ВИЧ -.

Анна Евгеньевна Панова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России, Москва, Россия

Казюлина А.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России, Москва, Россия

Грачева А.Н.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России, Москва, Россия

Самойлова А.Г.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России, Москва, Россия

Ирина Анатольевна Васильева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр фтизиопульмонологии и инфекционных заболеваний» Минздрава России, Москва, Россия

  • 1. Karpina N.L., Egorova A.D., Chesalina Ya.O., Shabalina I.Yu., Ergeshov A.E. Aspects of stage-by-stage diagnosis of pulmonary mycobacteriosis in real clinical practice. Tuberculosis and lung diseases. 2023;101(2):30-37. Russian. (Карпина Н.Л., Егорова А.Д., Чесалина Я.О., Шабалина И.Ю., Эргешов А.Э. Аспекты этапной диагностики микобактериоза легких в реальной клинической практике. Туберкулез и болезни легких. 2023;101(2):30-37.) DOI: 10.58838/2075-1230-2023-101-2-30-37
  • 2. Eliseev P.I., Gurieva T.I., Nikishova E.I., Khimova E.S., Maryandyshev A.O. Detection of non-tuberculous mycobacteria and treatment of mycobacteriosis in Arkhangelsk oblast in 2010-2020. Tuberculosis and lung diseases. 2024;102(5):12-20. Russian. (Елисеев П.И., Гурьева Т.И., Никишова Е.И., Химова Е.С., Марьяндышев А.О. Выявление нетуберкулезных микобактерий и лечение микобактериозов в Архангельской области в 2010-2020 гг. Туберкулез и болезни легких. 2024;102(5):12-20.) DOI: 10.58838/2075-1230-2024-102-5-12-20
  • 3. Savchenko M.A. Сlinical and epidemiological aspects of mycobacteriosis in patients with HIV infection. HIV infection and immunosuppressive disorders. 2019;11(2):27-33. Russian (Савченко М.А. Клинические и эпидемиологические аспекты микобактериоза у пациентов с ВИЧ-инфекцией. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2019;11(2):27-33.) DOI: 10.22328/2077-9828-2019-11-2-27-33
  • 4. Starkova D.A., Zhuravlev V.Ju., Vjazovaja A.A., Solov'eva N.S., Kulikova O.N., Narvskaja O.V. Species diversity of non-tuberculous mycobacteria in patients with mycobacteriosis in the North-Western Federal District of Russia. Tuberculosis and lung diseases. 2019;97(6):16-22. Russian. (Старкова Д.А., Журавлев В.Ю., Вязовая А.А., Соловьева Н.С., Куликова О.Н., Нарвская О.В. Видовое разнообразие нетуберкулезных микобактерий у больных микобактериозом на территориях Северо-Западного федерального округа России. Туберкулез и болезни легких. 2019;97(6):16-22.) DOI: 10.21292/2075-1230-2019-97-6-16-22
  • 5. Mihajlovskij A.M., Churkin S.A., Pashkova N.A., Lepeha L.N. Frequency of detection and morphology features of non-tuberculous mycobacteriosis in patients at the late stage of HIV infection (according to the Orenburg region). Tuberculosis and lung diseases. 2016;94(12):57-61. Russian. (Михайловский А.М., Чуркин С.А., Пашкова Н.А., Лепеха Л.Н. Частота выявления и особенности морфологии нетуберкулезного микобактериоза у больных на поздней стадии ВИЧ-инфекции (по данным Оренбургской области). Туберкулез и болезни легких 2016;94(12):57-61.) DOI: 10.21292/2075-1230-2016-94-12-57-61
  • 6. Smirnovа T.G., Аndreevskаya S.N., Lаrionovа E.E., Аndrievskаya I.Yu., Ustinovа V.V., Chernousovа L.N. Monitoring of species diversity of non-tuberculosis mycobacteria in some Russian regions using DNA-strips of Genotype Mycobacterium CM/AS (Hain Lifescience, Germany). Tuberculosis and lung diseases. 2017;95(5):54-59. Russian. (Cмирнова Т.Г., Андреевская С.Н., Ларионова Е.Е., Андриевская И.Ю., Устинова В.В., Черноусова Л.Н. Мониторинг видового разнообразия нетуберкулезных микобактерий в ряде областей РФ с использованием ДНК-стрипов Genotype Mycobacterium CM/AS (Hain Lifescience, Германия). Туберкулез и болезни легких. 2017;95(5):54-59.) DOI: 10.21292/2075-1230-2017-95-5-54-59
  • 7. Beloborodova E.N., Zimina V.N., Degtyareva S.Y., Gizatullina F.B., Volchenkov G.V., Fesenko O.V. Clinical and epidemiological characteristics of mycobacteriosis in two subjects of the Russian Federation. Infectious Diseases. 2020;18(1):35-42. Russian. (Белобородова Е.Н., Зимина В.Н., Дегтярева С.Ю., Гизатуллина Ф.Б., Волченков Г.В., Фесенко О.В. Клинико-эпидемиологическая характеристика микобактериоза в двух субъектах Российской Федерации. Инфекционные болезни. 2020;18(1):35-42.) DOI: 10.20953/1729-9225-2020-1-35-42
  • 8. «List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature» (LPSN). Available at: https://lpsn.dsmz.de/order/mycobacteriales. Accessed May 2025.
  • 9. Honda J.R., Virdi R., Chan E.D. Global environmental nontuberculous mycobacteria and their contemporaneous man-made and natural niches. Front Microbiol. 2018;30(9):2029. DOI: 10.3389/fmicb.2018.02029
  • 10. Tabata E., Sekine A., Hagiwara E., Tajiri M., Ogura T. Bronchoscopy as a useful examination for determining surgical treatment indications in refractory Mycobacterium avium complex lung disease patients with bilateral lesions. Intern Med. 2019;58(7):973-978. DOI: 10.2169/internalmedicine.1370-18
  • 11. Griffith D.E., Aksamit T., Brown-Elliott B.A., Catanzaro A., Daley C., Gordin F., et al.; ATS Mycobacterial Diseases Subcommittee; American Thoracic Society; Infectious Disease Society of America. An official ATS/IDSA statement: diagnosis, treatment, and prevention of nontuberculous mycobacterial diseases. Am J Respir Crit Care Med. 2007;175(4):367-416. DOI: 10.1164/rccm.200604-571ST. Erratum in: Am J Respir Crit CareMed. 2007;175(7):744-745.
  • 12. David E. Griffith, Ed. Nontuberculous Mycobacterial Disease. A Comprehensive Approach to Diagnosis and Management. Springer Nature Switzerland AG 2019. ISBN 978-3-319-93472-3.
  • 13. Wu U.I., Holland S.M. A genetic perspective on granulomatous diseases with an emphasis on mycobacterial infections. Semin Immunopathol. 2016;38(2):199-212. DOI: 10.1007/s00281-015-0552-y
  • 14. Koh W.J. Nontuberculous mycobacteria – overview. Microbiol Spectr. 2017;5(1):1128. DOI: 10.1128/microbiolspec.TNMI7-0024-2016
  • 15. Wu M.L., Aziz D.B., Dartois V., Dick T. NTM drug discovery: status, gaps and the way forward. Drug Discov Today. 2018;23(8):1502-1519. DOI: 10.1016/j.drudis.2018.04.001
  • 16. Oi I., Fujita K., Fujimoto N., Yoshimura S., Ito T., Imakita T., et al. Mycobacterium avium (MAC) lung disease in postCOVID-19 bronchiectasis: a need for caution as a potential risk factor for MAC infection. Egypt J Bronchol. 2025;19:18. DOI: 10.1186/s43168-025-00375-5
  • 17. Masoumi M., Sakhaee F., Vaziri F., Siadat S.D., Fateh A. Reactivation of Mycobacterium simiae after the recovery of COVID-19 infection. J Clin Tuberc Other Mycobact Dis. 2021;24:100257. DOI: 10.1016/j.jctube.2021.100257
  • 18. TB/COVID-19 Global Study Group. Tuberculosis and COVID-19 co-infection: description of the global cohort. Eur Respir J. 2022;59(3):2102538. DOI: 10.1183/13993003.02538-2021
  • 19. Falkinham J.O. 3rd. Epidemiology of infection by nontuberculous mycobacteria. Clin Microbiol Rev. 1996;9(2):177-215. DOI: 10.1128/CMR.9.2.177
  • 20. Anisimova A.I., Pavlova M.V., Archakova L.I., Sapozhnikova N.V., Chernokhaeva I.V., Gavrilov P.V., Sokolovich E.G. Mycobacteriosis of the lungs: difficulties in diagnosis and treatment (literature review). Medical alliance. 2020;8(1):25-31. Russian. (Анисимова А.И., Павлова М.В., Арчакова Л. И., Сапожникова Н.В., Чернохаева И.В., Гаврилов П.В., Cоколович Е.Г. Микобактериозы легких: сложности диагностики и лечения (обзор литературы). Медицинский альянс. 2020;8(1):25-31.) DOI: 10.36422/23076348-2020-8-1-25-31
  • 21. Primm T.P., Lucero C.A., Falkinham J.O. 3rd. Health impacts of environmental mycobacteria. Clin Microbiol Rev. 2004;17(1):98-106. DOI: 10.1128/CMR.17.1.98-106.2004
  • 22. Falkinham J.O. 3rd. Nontuberculous mycobacteria in the environment. Clin Chest Med. 2002;23(3):529-551. DOI: 10.1016/s0272-5231(02)00014-x
  • 23. Huang C.K., Weerasekara A., Lu J., Carter R., Weynberg K.D., Thomson R., et al. Extended water stagnation in buildings during the COVID-19 pandemic increases the risks posed by opportunistic pathogens. Water Res X. 2023;21:100201. DOI: 10.1016/j.wroa.2023.100201
  • 24. Parmar S., Tocheva E.I. The cell envelope of Mycobacterium abscessus and its role in pathogenesis. PLoS Pathog. 2023;19(5):e1011318. DOI: 10.1371/journal.ppat.1011318
  • 25. Bermudez L.E., Danelishvili L., Babrack L., Pham T. Evidence for genes associated with the ability of Mycobacterium avium subsp. hominissuis to escape apoptotic macrophages. Front Cell Infect Microbiol. 2015;5:63. DOI: 10.3389/fcimb.2015.00063
  • 26. Petrofsky M., Bermudez L.E. CD4+ T cells but Not CD8+ or gammadelta+ lymphocytes are required for host protection against Mycobacterium avium infection and dissemination through the intestinal route. Infect Immun. 2005;73(5):2621-2627. DOI: 10.1128/IAI.73.5.2621-2627.2005
  • 27. Starkova D.A., Narvskaya O.V. Genetic determinants of virulence and drug resistance of Mycobacterium avium subsp. hominissuis – a causative agent of mycobacteriosis in humans. Infektsiya i immunitet, 2020;10(1):26-34. Russian. (Старкова Д.А., Нарвская О.В. Генетические детерминанты вирулентности и лекарственной устойчивости Mycobacterium avium subsp. hominissuis – возбудителя микобактериоза человека. Инфекция и иммунитет. 2020;10(1):26-34.) DOI: 10.15789/2220-7619-GDO1220
  • 28. Panteleev A.M., Dracheva M.S., Nikulina O.V., Sokolova O.S., Zonova A.V. Clinical and laboratory features of atypical mycobacteriosis in HIV-patients. Journal infectology. 2016;8(3):40-45. Russian. (Пантелеев А.М., Драчева М.С., Никулина О.В., Соколова О.С., Зонова А.В. Клинико-лабораторные особенности микобактериоза у больных вич-инфекцией. Журнал инфектологии. 2016;8(3):40-45.)
  • 29. Nightingale S.D., Byrd L.T., Southern P.M., Jockusch J.D., Cal S.X., Wynne B.A. Incidence of Mycobacterium avium-intracellulare complex bacteremia in human immunodeficiency virus-positive patients. J Infect Dis. 1992;165(6):1082-1085. DOI: 10.1093/infdis/165.6.1082
  • 30. Falkinham J.O. 3rd. Ecology of nontuberculous mycobacteria – where do human infections come from? Semin Respir Crit Care Med. 2013;34(1):95-102. DOI: 10.1055/s-0033-1333568
  • 31. Collins L.F., Clement M.E., Stout J.E. Incidence, longterm outcomes, and healthcare utilization of patients with human immunodeficiency virus/acquired immune deficiency syndrome and disseminated Mycobacterium avium complex from 1992-2015. Open Forum Infect Dis. 2017;4(3):ofx120. DOI: 10.1093/ofid/ofx120
  • 32. Hu J., Gu L., Shao Y., Zhang R., Qi T., Sun J., Wang Z., et al. Long-term case-fatality rate of nontuberculous mycobacterial disease in people living with HIV. Infect Dis Poverty. 2022;11(1):16. DOI: 10.1186/s40249-022-00942-8
  • 33. Kobayashi T., Nishijima T., Teruya K., Aoki T., Kikuchi Y., Oka S., et al. High mortality of disseminated nontuberculous mycobacterial infection in HIV-infected patients in the antiretroviral therapy era. PLoS One. 2016;11(3):e0151682. DOI: 10.1371/journal.pone.0151682
  • 34. von Reyn C.F., Maslow J.N., Barber T.W., Falkinham J.O. 3rd, Arbeit R.D. Persistent colonisation of potable water as a source of Mycobacterium avium infection in AIDS. Lancet. 1994;343(8906):1137-1141. DOI: 10.1016/s0140-6736(94)90239-9
  • 35. MacDonell K.B., Glassroth J. Mycobacterium avium complex and other nontuberculous mycobacteria in patients with HIV infection. Semin Respir Infect. 1989;4(2):123-132. PMID: 2664936.
  • 36. Horsburgh C.R., Selik R.M. The epidemiology of disseminated nontuberculous mycobacterial infection in the acquired immunodeficiency syndrome (aids) Am Rev Respir Dis. 1989;139:4-7. DOI: 10.1164/ajrccm/139.1.4
  • 37. Daley C.L., Iaccarino J.M., Lange C., Cambau E., Wallace R.J. Jr, Andrejak C., et al. Treatment of nontuberculous mycobacterial pulmonary disease: an official ATS/ERS/ESCMID/IDSA clinical practice guideline. Eur Respir J. 2020;56(1):2000535. DOI: 10.1183/13993003.00535-2020
  • 38. Wallace R.J. Jr, Brown-Elliott B.A., McNulty S., Philley J.V., Killingley J., Wilson R.W., et al. Macrolide/azalide therapy for nodular/bronchiectatic Mycobacterium avium complex lung disease. Chest. 2014;146(2):276-282. DOI: 10.1378/chest.13-2538
  • 39. Jeong B.H., Jeon K., Park H.Y., Kim S.Y., Lee K.S., Huh H.J., et al. Intermittent antibiotic therapy for nodular bronchiectatic Mycobacterium avium complex lung disease. Am J Respir Crit Care Med. 2015;191(1):96-103. DOI: 10.1164/rccm.201408-1545OC
  • 40. Griffith D.E., Brown-Elliott B.A., Langsjoen B., Zhang Y., Pan X., Girard W., et al. Clinical and molecular analysis of macrolide resistance in Mycobacterium avium complex lung disease. Am J Respir Crit Care Med. 2006;174(8):928-934. DOI: 10.1164/rccm.200603-450OC
  • 41. Clinical guidelines «Mycobacteriosis of the respiratory system», 2022. Available at: https://spulmo.ru/upload/kr/Microbakterioz_2022.pdf. Accessed June 05, 2025. Russian. (Клинические рекомендации «Микобактериозы органов дыхания», 2022. Доступно по адресу: https://spulmo.ru/upload/kr/Microbakterioz_2022.pdf. Ссылка активна на 05 июня 2025 г.)
  • 42. van Ingen J., Bendien S.A., de Lange W.C., Hoefsloot W., Dekhuijzen P.N., Boeree M.J., et al. Clinical relevance of non-tuberculous mycobacteria isolated in the NijmegenArnhem region, The Netherlands. Thorax. 2009;64(6):502-506. DOI: 10.1136/thx.2008.110957
  • 43. Lambert P.A. Cellular impermeability and uptake of biocides and antibiotics in Gram-positive bacteria and mycobacteria. J Appl Microbiol. 2002;92(Suppl.):46S54S. PMID: 12000612.
  • 44. Huh H.J. Kim S.Y., Jhun B.W., Shin S.J., Koh W.J. Recent advances in molecular diagnostics and understanding mechanisms of drug resistance in nontuberculous mycobacterial diseases. Infect Genet Evol. 2019;72:169-182. DOI: 10.1016/j.meegid.2018.10.003
  • 45. Griffith D.E., Brown B.A., Cegielski P., Murphy D.T., Wallace R.J. Jr. Early results (at 6 months) with intermittent clarithromycin-including regimens for lung disease due to Mycobacterium avium complex. Clin Infect Dis. 2000;30(2):288-292. DOI: 10.1086/313644
  • 46. Griffith D.E., Brown B.A., Girard W.M., Griffith B.E., Couch L.A., Wallace R.J. Jr. Azithromycin-containing regimens for treatment of Mycobacterium avium complex lung disease. Clin Infect Dis. 2001;32(11):1547-1553. DOI: 10.1086/320512
  • 47. Haworth C.S., Banks J., Capstick T., Fisher A.J., Gorsuch T., Laurenson I.F., et al. British Thoracic Society guidelines for the management of non-tuberculous mycobacterial pulmonary disease (NTM-PD). Thorax. 2017;72(Suppl. 2):ii1-ii64. DOI: 10.1136/thoraxjnl-2017-210927
  • 48. Lam P.K., Griffith D.E., Aksamit T.R., Ruoss S.J., Garay S.M., Daley C.L., et al. Factors related to response to intermittent treatment of Mycobacterium avium complex lung disease. Am J Respir Crit Care Med. 2006;173(11):1283-1289. DOI: 10.1164/rccm.200509-1531OC
  • 49. Ruth M.M., Sangen J.J.N., Remmers K., Pennings L.J., Svensson E., Aarnoutse R.E., et al. A bedaquiline/clofazimine combination regimen might add activity to the treatment of clinically relevant non-tuberculous mycobacteria. J Antimicrob Chemother. 2019;74(4):935-943. DOI: 10.1093/jac/dky526
  • 50. Vesenbeckh S., Schönfeld N., Krieger D., Bettermann G., Bauer T., Rüssmann H., et al. Bedaquiline as a potential agent in the treatment of M. intracellulare and M. avium infections. Eur Respir J. 2017;9(3):1969-2016. DOI: 10.1183/13993003.01969-2016
  • 51. Albendín-Iglesias H, Caminero JA, Galera Peñaranda C. Bedaquiline and delamanid: salvage therapy in Mycobacterium avium infection with treatment failure. Arch Bronconeumol. 2023;59(5):328-329. DOI: 10.1016/j.arbres.2023.02.014
  • 52. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Susceptibility Testing of Mycobacteria, Nocardiae, and Other Aerobic Actinomycetes. CLSI M24, 3rd ed., 2018.
  • 53. Makarova M.V., Khachaturyants E.N., Krasnova M.A. Drug susceptibility of nontuberculous Mycobacteria. Tuberculosis and lung diseases. 2011;88(6):51-5. Russian. (Макарова М.В., Хачатурьянц Е.Н., Краснова М.А. Чувствительность нетуберкулезных микобактерий к лекарственным препаратам. Туберкулез и болезни легких. 2011;88(6):51-55.)
  • 54. Clinical guidelines «Tuberculosis in adults», 2024. Available at: https://cr.minzdrav.gov.ru/view-cr/16_3. Accessed May 2025. Russian. (Клинические рекомендации «Туберкулез у взрослых», 2024. Доступно по адресу: https://cr.minzdrav.gov.ru/view-cr/16_3. Ссылка активна на май 2025 г.)
  • 55. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance Standards for Susceptibility Testing of Mycobacteria, Nocardia spp., and Other Aerobic Actinomycetes. M24S, 2nd ed., 2023.
Просмотров
0 Аннотация
0 PDF
0 Цитирования
Поделились