Микробиологическая активность бовгиалуронидазы азоксимера в отношении микробных биопленок | КМАХ

Микробиологическая активность бовгиалуронидазы азоксимера в отношении микробных биопленок

Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2024; 26(4):487-495

​ Козлов Р.С., Тапальский Д.В., Карпова Е.В., Петровская Т.А., Куркова А.А.
10.36488/cmac.2024.4.487-495
бовгиалуронидаза азоксимер Staphylococcus aureus Staphylococcus epidermidis Candida albicans Enterococcus faecalis Escherichia coli биопленка
Раздел
Опыт работы
Тип
Оригинальная статья
Публикация
Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2024; 26(4):487-495

Цель.

Оценить способность бовгиалуронидазы азоксимера вызывать деструкцию биопленок, сформированных выделенными от пациентов клиническими штаммами микроорганизмов.

Материалы и методы.

В исследование было включено 50 клинических штаммов Staphylococcus aureus (25 штаммов), Staphylococcus epidermidis (6), Enterococcus faecalis (8), Escherichia coli (9), Candida albicans (2). Оценку интенсивности образования микробных биопленок в присутствии антибиотиков, бовгиалуронилазы азоксимера и их комбинаций выполняли в 96-луночных планшетах в бульоне Мюллера-Хинтон и сердечно-мозговом бульоне с фиксацией биопленок 2,5% раствором глютаральдегида, окрашиванием 0,25% раствором кристаллического фиолетового и экстракцией красителя 33% раствором уксусной кислоты.

Результаты.

Бовгиалуронидаза азоксимер в концентрациях 64–1000 МЕ/мл способен in vitro эффективно разрушать матрикс предварительно сформированных биопленок метициллинорезистентных штаммов S. aureus, а также S. epidermidis, E. coli, C. albicans, оказывая при этом дозозависимый эффект.

Выводы.

При сочетанном воздействии с антибиотиками на микробные биопленки, сформированные микроорганизмами с множественной лекарственной устойчивостью, бовгиалуронидаза азоксимер будет потенцировать антимикробные эффекты, разрушая экзополисахаридный матрикс и облегчая проникновение антибиотиков к клеточным мишеням.

Козлов Роман Сергеевич

ФГБОУ ВО «Смоленский государственный медицинский университет» Минздрава России, Смоленск, Россия

Тапальский Дмитрий Викторович

ГНУ «Институт физиологии НАН Беларуси», Минск, Беларусь

Карпова Е.В.

УО «Гомельский государственный медицинский университет», Гомель, Беларусь

Татьяна Александровна Петровская

УО «Гомельский государственный медицинский университет», Гомель, Беларусь

Куркова Анастасия Алексеевна

ФГБОУ ВО «Смоленский государственный медицинский университет» Минздрава России, Смоленск, Россия

  • 1. Maharjan G., Khadka P., Siddhi Shilpakar G., Chapagain G., Dhungana G.R. Catheter-associated urinary tract infection and obstinate biofilm producers. Can J Infect Dis Med Microbiol. 2018;2018:7624857. DOI: 10.1155/2018/7624857
  • 2. Bjarnsholt T. The role of bacterial biofilms in chronic infections. APMIS Suppl. 2013;(136):1-51. DOI: 10.1111/apm.12099
  • 3. Garnett J.A., Matthews S. Interactions in bacterial biofilm development: a structural perspective. Curr Protein Pept Sci. 2012;13(8):739-755. DOI: 10.2174/138920312804871166
  • 4. Moons P. Bacterial interactions in biofilms. Crit Rev Microbiol. 2009;35(3):157-168. DOI: 10.1080/10408410902809431
  • 5. Hall C.W., Mah T.F. Molecular mechanisms of biofilmbased antibiotic resistance and tolerance in pathogenic bacteria. FEMS Microbiol Rev. 2017;41(3):276-301. DOI: 10.1093/femsre/fux010
  • 6. Costerton W., Veeh R., Shirtliff M., Pasmore M., Post C., Ehrlich G. The application of biofilm science to the study and control of chronic bacterial infections. J Clin Invest. 2003;112(10):1466-1477. DOI: 10.1172/JCI20365
  • 7. Davies D. Understanding biofilm resistance to antibacterial agents. Nat Rev Drug Discov. 2003;2(2):114-122. DOI: 10.1038/nrd1008
  • 8. Kolchanova N.E., Okulich V.K., Shilin V.E. Determination of the periodontal poket bacteria’s to form microbic communities and its chemical and biological objects resistance. Immunopathology, allergology, infectology. 2015;3:56-61. Russian. (Колчанова Н.Э., Окулич В.К., Шилин В.Е. Определение образования микробной биопленки бактериями периодонтального кармана и ее устойчивости к химическим и биологическим объектам. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2015;3:56-61.) DOI: 10.14427/jipai.2015.3.56
  • 9. Ibberson C.B., Parlet C.P., Kwiecinski J., Crosby H.A., Meyerholz D.K., Horswill A.R. Hyaluronan modulation impacts Staphylococcus aureus biofilm infection. Infect Immun. 2016;84(6):1917-1929. DOI: 10.1128/IAI.01418-15
  • 10. Trizna E., Baidamshina D., Gorshkova A., Drucker V., Bogachev M., Tikhonov A., et al. Improving the efficacy of antimicrobials against biofilm-embedded bacteria using bovine hyaluronidase azoximer (Longidaza®). Pharmaceutics. 2021;13(11):1740. DOI: 10.3390/pharmaceutics13111740
  • 11. Stepanovic S., Vukovic D., Hola V., Di Bonaventura G., Djukic S., Cirković I., Ruzicka F. Quantification of biofilm in microtiter plates: overview of testing conditions and practical recommendations for assessment of biofilm production by staphylococci. APMIS. 2007;115(8):891-899. DOI: 10.1111/j.1600-0463.2007.apm_630.x
  • 12. Saini H., Vadekeetil A., Chhibber S., Harjai K. Azithromycinciprofloxacin-impregnated urinary catheters avert bacterial colonization, biofilm formation, and inflammation in a murine model of foreign-body-associated urinary tract infections caused by Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother. 2017;61(3):e01906-16. DOI: 10.1128/AAC.01906-16
  • 13. Andersen M.J., Flores-Mireles A.L. Urinary catheter coating modifications: the race against catheter-associated infections. Coatings. 2020;10:23. DOI: 10.3390/coatings10010023
  • 14. Cortese Y.J., Wagner V.E., Tierney M., Devine D., Fogarty A. Review of catheter-associated urinary tract infections and in vitro urinary tract models. J Healthc Eng. 2018;2018:2986742. DOI: 10.1155/2018/2986743
  • 15. Uruen C., Chopo-Escuin G., Tommassen J., MainarJaime R.C., Arenas J. Biofilms as promoters of bacterial antibiotic resistance and tolerance. Antibiotics. 2020;10(1):3. DOI: 10.3390/antibiotics1001003
  • 16. Hacioglu M., Oyardi O., Bozkurt-Guzel C., Savage P.B. Antibiofilm activities of ceragenins and antimicrobial peptides against fungal-bacterial mono and multispecies biofilms. J Antibiot. 2020;73:455-462. DOI: 10.1038/s41429-020-0299-0
  • 17. Weiland-Bräuer N., Malek I., Schmitz R.A. Metagenomic quorum quenching enzymes affect biofilm formation of Candida albicans and Staphylococcus epidermidis. PLoS One. 2019;14(1):e0211366. DOI: 10.1371/journal.pone.0211366
  • 18. Sharafutdinov I.S., Ozhegov G.D., Sabirova A.E., Novikova V.V., Lisovskaya S.A., Khabibrakhmanova A.M., et al. Increasing susceptibility of drug-resistant Candida albicans to fluconazole and terbinafine by 2(5H)-furanone derivative. Molecules. 2020;25(3):642. DOI: 10.3390/molecules25030642
  • 19. Thallinger B., Prasetyo E.N., Nyanhongo G.S., Guebitz G.M. Antimicrobial enzymes: an emerging strategy to fight microbes and microbial biofilms. Biotechnol J. 2013;8(1):97-109. DOI: 10.1002/biot.201200313
  • 20. Nahar S., Mizan M.F.R., Ha A.J.W., Ha S.D. Advances and future prospects of enzyme-based biofilm prevention approaches in the food industry. Compr Rev Food Sci Food Saf. 2018;17(6):1484-1502. DOI: 10.1111/1541-4337.12382
  • 21. Troshina N.A., Dolgushin I.I., Dolgushina V.F., Bakhareva L.I., Kurnosenko I.V., Nadvikova T.V. Effect of Longidaze on microbial landscape of cervical canal and uterine cavity during therapy of women with chronic nonspecific endometritis and uterus myoma. ZHurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii. 2015;(4):71-74. Russian. (Трошина Н.А., Долгушин И.И., Долгушина В.Ф., Бахарева Л.И., Курносенко И.В., Надвидкова Т.В. Влияние Лонгидазы на микробный пейзаж цервикального канала и полости матки при лечении женщин с хроническим неспецифическим эндометритом и миомой матки. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2015;(4):71-74.)
  • 22. Kulchavenya E.V., Shvetsova O.P., Breusov A.A. Rationale of use and effectiveness of Longidaza in patients with chronic prostatitis. Urology. 2018;4:64-71. Russian. (Кульчавеня Е.В., Швецова О.П., Бреусов А.А. Обоснование применения и эффективности Лонгидазы у пациентов с хроническим простатитом. Урология. 2018;4:64-71.) DOI: 10.18565/urology.2018.4:64-71
  • 23. Gatina A., Trizna E., Kolesnikova A., Baidamshina D., Gorshkova A., Drucker V., et al. The bovhyaluronidase azoximer (Longidaza®) disrupts Candida albicans and Candida albicans-bacterial mixed biofilms and increases the efficacy of antifungals. Medicina. 2022;58(12):1710. DOI: 10.3390/medicina58121710
Просмотров
0 Аннотация
0 PDF
0 Цитирования
Поделились