Антибиотикорезистентность госпитальных штаммов Enterococcus spp., выделенных из гемокультуры больных опухолями системы крови: результаты многоцентрового исследования | КМАХ

Антибиотикорезистентность госпитальных штаммов Enterococcus spp., выделенных из гемокультуры больных опухолями системы крови: результаты многоцентрового исследования

Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2018; 20(2):142-149

​ Клясова Г.А., Фёдорова А.В., Фролова И.Н., Хрульнова С.А., Ветохина А.В., Капорская Т.С., Скоробогатова Е.В., Молчанова И.В., Поспелова Т.И., Крайнова Л.Е., Шушурина С.Е., Хорева О.Е., Звёздкина Н.Н., Куцевалова О.Ю.
10.36488/cmac.2018.2.142-149
бактериемия гемобластозы ванкомицин-устойчивые энтерококки Enterococcus faecium антибиотикорезистентность линезолид-резистентность
Раздел
Антибиотикорезистентность
Тип
Журнальная статья
Публикация
Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2018; 20(2):142-149

Цель.

Изучить чувствительность Enterococcus spp., выделенных из гемокультуры больных опухолями системы крови, к антибактериальным препаратам.

Материалы и методы.

Чувствительность к антибактериальным препаратам 427 изолятов Enterococcus spp., выделенных в рамках многоцентрового исследования в 10 стационарах 8 городов России в 2002-2016 гг., была изучена методом серийных микроразведений в бульоне [CLSI 2015].

Результаты.

Среди возбудителей бактериемии преобладали Е. faecium (78,2%), далее следовали E. faecalis (19,7%) и другие виды Enterococcus (2,1%). За период исследования было выявлено 50 (15%) ванкомицин-устойчивых E. faecium (Vancomycin-resistant Enterococcus — VRE), из них 33 (66%) имели ген vanA, 17 (34%) — ген vanB. В 2012 г. был выделен один изолят E. faecium, устойчивый к линезолиду (МПК 16 мкг/мл). При секвенировании линезолид-устойчивого E. faecium были определены мутации в гене, кодирующем 23S pРНК. Все VRE E. faecium, включая линезолид-устойчивый изолят, были чувствительны к даптомицину. Все изоляты E. faecium были чувствительны к тигециклину, 78,7% к хлорамфениколу, 74,9% к тетрациклину. Доля E. faecium с высоким уровнем резистентности к гентамицину составила 85%, к стрептомицину — 60%, одновременно к обоим аминогликозидам — 45%. Все E. faecalis были чувствительны к линезолиду, тейкопланину и тигециклину, 97,6% к ампициллину. В исследовании был выделен один штамм E. faecalis (1,2%), умеренно резистентный к ванкомицину с геном резистентности vanD, и один изолят E. gallinarum, устойчивый к ванкомицину, несущий гены устойчивости vanC1 и vanB.

Выводы.

Изоляты E. faecalis имели более благоприятный профиль чувствительности в сравнении с E. faecium. Среди E. faecium устойчивыми к ванкомицину были 15% штаммов, к линезолиду — один (0,3%). Нечувствительными к ванкомицину были по одному изоляту E. faecalis и E. gallinarum.

Клясова Галина Александровна

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Минздрава России, Москва, Россия

Фёдорова Анастасия Владимировна

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Минздрава России, Москва, Россия

Фролова И.Н.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Минздрава России, Москва, Россия

Хрульнова Светлана Алексеевна

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Минздрава России, Москва, Россия

Ветохина А.В.

Иркутская ордена «Знак Почета» областная клиническая больница, Иркутск, Россия

Капорская Т.С.

Иркутская ордена «Знак Почета» областная клиническая больница, Иркутск, Россия

Скоробогатова Е.В.

Российская детская клиническая больница ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России, Москва, Россия

Молчанова И.В.

Челябинская областная клиническая больница, Челябинск, Россия

Поспелова Т.И.

Городская клиническая больница №2, Новосибирск, Россия

Крайнова Л.Е.

Новосибирская областная клиническая больница, Новосибирск, Россия

Шушурина С.Е.

Самарская областная клиническая больница им. В.Д. Середавина, Самара, Россия

Хорева О.Е.

Сургутская окружная клиническая больница, Сургут, Россия

Звёздкина Н.Н.

Краевая клиническая больница, Барнаул, Россия

Куцевалова О.Ю.

ФГБУ «Ростовский научно-исследовательский онкологический институт» Минздрава России, Ростов-на-Дону, Россия

  • 1. Okhmat V.A., Klyasova G.A., Parovichnikova E.N., et al. Spectrum and epidemiology of infection complications in patients with acute myeloid leukemia during induction and consolidation chemotherapy. Gematologiya i transfusiologiya. 2017;62(1):9-15. Russian. (Охмат В.А., Клясова Г.А., Паровичникова Е.Н., и соавт. Спектр и этиология инфекционных осложнений у больных острыми миелоидными лейкозами на этапах индукции и консолидации ремиссии. Гематология и трансфузиология. 2017;62(1):9-15.).
  • 2. Klyasova G.A., Speranskaya L.L., Mironova A.V., et al. The pathogens causing sepsis in immunocompromized patients: structure and problems of antibiotic resistancE. Results of a multi-center cooperative study. Gematologiya i transfusiologiya. 2007;1:1-8. Russian. (Клясова Г.А., Сперанская Л.Л., Миронова А.В. и соавт. Возбудители сепсиса у иммунокомпрометированных больных: структура и проблемы антибиотикорезистентности (результаты многоцентрового исследования). Гематология и трансфузиология. 2007;1:1-8.).
  • 3. Klyasova G.A. Infections in patients with hematological malignancies: clinical features, diagnosis and treatment. PhD Thesis. Moscow; 2009. Russian. (Клясова Г.А. Инфекции при гемобластозах и депрессиях кроветворения: клиника, диагностика и лечение: Диссертация д-ра мед. наук. М.; 2009.).
  • 4. Mikulska M., Viscoli C., Orasch C., et al. Fourth European Conference on Infections in Leukemia Group (ECIL-4), a joint venture of EBMT, EORTC, ICHS, ELN and ESGICH/ESCMID. Aetiology and resistance in bacteraemias among adult and paediatric haematology and cancer patients. J Infect. 2013;68:321-331.
  • 5. Suntharam N., Lankford M.G., Trick W.E., Peterson L.R., Noskin G.A. Risk factors for acquisition of vancomycin-resistant enterococci among hematology-oncology patients. Diagnostic Microb Infect Dis. 2002;43:183-188.
  • 6. CLSI. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-Fifth Informational Supplement. CLSI document M100-S25. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2015.
  • 7. Dutka-Malen S., Evers S., Courvalin P. Detection of glycopeptide resistance genotypes and identification to the species level of clinically relevant enterococci by PCR. J Clin Microbiol. 1995;33:24-27.
  • 8. Bonora M.G., Ligozzi M., Luzzani A., et al. Emergence of linezolid resistance in Enterococcus faecium not dependent on linezolid treatment. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2006;25:197-198.
  • 9. Mendes R.E., Deshpande L.M., Farrell D.J., et al. Assessment of linezolid resistance mechanisms among Staphylococcus epidermidis causing bacteraemia in Rome, Italy. J Antimicrob Chemother. 2010;65(11):2329-2335.
  • 10. Kehrenberg C., Schwarz S. Distribution of florfenicol resistance genes fexA and cfr among chloramphenicol-resistant Staphylococcus isolates. Antimicrob Agents Chemother. 2006;50:1156-1163.
  • 11. Inkster T., Coia J., Meunier D., et al. First outbreak of colonization by linezolid- and glycopeptide-resistant Enterococcus faecium harbouring the cfr gene in a UK nephrology unit. J Hosp Infect. 2017;97(4):397402.
  • 12. Tan C.-K., Lai C.-C., Wang J.-Y., et al. Bacteremia caused by nonfaecalis and non-faecium enterococcus species at a medical center in Taiwan 2000 to 2008. J Infect. 2010;61(1):34-43.
  • 13. European Centre for Disease Prevention and Control. Surveillance Atlas of Infectious Diseases Stockholm: ECDC; 2017. Available at: https://ecdc.europa.eu/en/surveillance-atlas-infectious-diseases. Accessed: 21.06.2018.
  • 14. Jones R.N., Marshall S.A., Pfaller M.A., et al. Nosocomial enterococcal blood stream infections in the SCOPE Program: antimicrobial resistance, species occurrence, molecular testing results, and laboratory testing accuracy. SCOPE Hospital Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis. 1997;2:95-102.
  • 15. Sidorenko S.V., Rezvan S.P., Grudinina S.A., Krotova L.A., Sterkhova G.V. Multicenter trial of enterococcus antibiotic susceptibility. Antibiotiki i himioterapija. 1998;9:9-17. Russian. (Сидоренко С.В., Резван С.П., Грудинина С.А., Кротова Л.А., Стерхова Г.В. Результаты многоцентрового исследования антибиотикочувствительности энтерококков. Антибиотики и химиотерапия. 1998;9:9-17.).
  • 16. European Centre for Disease Prevention and Control. Antimicrobial resistance surveillance in Europe 2015. Annual report of the European Antimicrobial Resistance Surveillance Network (EARSNet). Stockholm: ECDC; 2016. Available at: https://ecdc.europa.eu/sites/portal/files/media/en/publications/Publications/antimicrobial-resistanceeurope-2015.pdf. Accessed: 21.06.2018.
  • 17. Weiner L.M., Webb A.K., Limbago B., et al. Antimicrobial-Resistant Pathogens Associated With Healthcare-Associated Infections: Summary of Data Reported to the National Healthcare Safety Network at the Centers for Disease Control and Prevention, 2011-2014. Infect Control Hosp Epidemiol. 2016;37:1288-1301.
  • 18. LeClercq R., Derlot E., Duval J., Courvalin P. Plasmid-mediated resistance to vancomycin and teicoplanin in Enterococcus faecium. N Engl J Med. 1988;319:157-161.
  • 19. Uttley A.H., Collins C.H., Naidoo J., George R.C. Vancomycinresistant enterococci. Lancet. 1988;i57-58.
  • 20. Kliasova G., Sidorenko S., Speranskaja L., Fedorova A.V. Detection of vanb2 in Enterococcus gallinarum in Moscow, Russia. Intern J Antimicrob Agents. 2004;24(2):131.366/79P.
  • 21. Fedorova A.V., Cherkashin E., Kliasova G., et al. First detection of vancomycin-resistant enterococci in Russia: genetic background. Clin Microbiol Infect. 2006;12(S4):131;P1819.
  • 22. Bagirova N.S., Dmitrieva N.V. Enterococcal bacteraemia in patients with haematological malignancies. Clin Microbiol Infect. 2006;12(S4):8;P699.
  • 23. Lyubimova A.V., Zueva L.P., Kolodgieva V.V., Goncharov A.E. Prevalence of Colonization of Neonatal Intensive Care Unit Patients with Vancomycin-Resistant Enterococci. Jepidemiologija i vakcinoprofilaktika. 2011;4(59):27-30. Russian. (Любимова А.В., Зуева Л.П., Колоджиева В.В., Гончаров А.Е. Ванкомицин-резистентные энтерококки в отделениях реанимации. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2011;4(59):27-30.).
  • 24. Brilliantova A.N., Kliasova G.A., Mironova A.V., et al. Spread of vancomycin-resistant Enterococcus faecium in two haematological centres in Russia. Intern J Antimicrob Agents. 2010;35(2):177-181.
  • 25. Cattoir V., Leclercq R. Twenty-five of shared life with vancomycinresistant enterococci: is it time to divorce? J Antimicrob Chemother. 2013;68:731-742.
  • 26. Boyd D.A., Willey B.M., Fawcett D., Gillani N., Mulvey M.R. Molecular characterization of Enterococcus faecalis N06-0364 with low-level vancomycin resistance harboring a novel D-Ala-D-Ser gene cluster, vanL. Antimicrob Agents Chemother. 2008;52(7):2667-2672.
  • 27. Deshpande, L.M., Fritsche T.R., Moet G.J., Biedenbach D.J., Jones R.N. Antimicrobial resistance and molecular epidemiology of vancomycin-resistant enterococci from North America and Europe: a report from the SENTRY antimicrobial surveillance program. Diagn Microbiol Infect Dis. 2007;58:163-170.
  • 28. Coombs G.W., Pearson J.C., Daly D.A., et al. Molecular epidemiology of enterococcal bacteremia in Australia. J Clin Microbiol. 2014;52:897-905.
  • 29. Eshaghi A., Shahinas D., Li A., et al. Characterization of an Enterococcus gallinarum Isolate Carrying a Dual vanA and vanB CassettE. J Clin Microbiol. 2015;53(7):2225-2229.
  • 30. Dekhnich А.V., Hachatryan N.N. New and old oxazolidinones: tedizolid vs. linezolid. Klinicheskaja mikrobiologija i antimikrobnaja himioterapija. 2017;19(2):121-129. Russian. (Дехнич А.В., Хачатрян Н.Н. Новые и старые оксазолидиноны. Тедизолид и линезолид – в чем отличия? Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2017;19(2):121-129.).
  • 31. Patel R., Gallagher J.C. Vancomycin-resistant enterococcal bacteremia pharmacotherapy. Ann Pharmacother. 2015;49(1):69-85.
  • 32. Mendes R.E., Hogan P.A., Streit J.M., Jones R.N., Flamm R.K. Zyvox® Annual Appraisal of Potency and Spectrum (ZAAPS) program: report of linezolid activity over 9 years (2004-12). J Antimicrob Chemother. 2014;69(6):1582-1588.
  • 33. Pogue J.M., Paterson D.L., Pasculle A.W., Potoski B.A. Determination of risk factors associated with isolation of linezolid-resistant strains of vancomycin-resistant enterococcus. Infect Control Hosp Epidemiol. 2007;28(12):1382-1388.
  • 34. Aznar J., Lepe J.A., Dowzicky M.J. Antimicrobial susceptibility among E. faecalis and E. faecium from France, Germany, Italy, Spain and the UK (T.E.S.T. Surveillance Study, 2004-2009). J Chemother. 2012;24(2):74-80.
  • 35. Sader H.S., Farrell D.J., Flamm R.K., Jones R.N. Daptomycin activity tested against 164457 bacterial isolates from hospitalised patients: summary of 8 years of a Worldwide Surveillance Programme (20052012). Int J Antimicrob Agents. 2014;43(5):465-469.
  • 36. Casapao A.M., Kullar R., Davis S.L., et al. Multicenter study of highdose daptomycin for treatment of enterococcal infections. Antimicrob Agents Chemother. 2013;57(9):4190-4196.
Просмотров
0 Аннотация
0 PDF
0 Цитирования
Поделились