Аннотация
После введения вакцинации семивалентной пневмококковой конъюгированной вакциной (ПКВ7) частота заболеваний, связанных с невакцинными серотипами пневмококка, в первую очередь с серотипом 19А, возросла, что объясняли феноменом замещения серотипов. Однако в некоторых странах похожая ситуация складывалась и в период, предшествовавший введению вакцины. В настоящем исследовании мы ретроспективно изучили коллекцию неинвазивных 19А-пневмококков (n=49), собранных в России в 2002-2013 гг., и описали изменения их клонального состава в сочетании с чувствительностью к антимикробным препаратам и носительством генов пилей. Большинство (80%) изолятов относилось к четырём глобально распространённым клональным комплексам, СС156, СС230, СС320 и СС663. Пневмококки серотипа 19А в 2010-2013 гг. преимущественно относились к СС230 и СС320 (70%), заместив распространённые ранее СС156 и СС663. Все изоляты CC156, CC320 и CC663 имели значения минимальной подавляющей концентрации (МПК) пенициллина ≥1 мг/л, в то время как изоляты CC230 характеризовались умеренными и низкими значениями МПК пенициллина и были полностью чувствительны к амоксициллину и цефтриаксону. Это свидетельствовало о том, что чувствительность к β-лактамным антибиотикам исследованных 19А-пневмококков имела клональный характер. Очевидно, что изменение эпидемиологии пневмококковых серотипов, в том числе серотипа 19A — это многофакторное явление, отражающее влияние вакцинации, практики использования антибиотиков, а также естественные колебания.
ФГАУ «Национальный научно-практический центр здоровья детей» Минздрава России, Москва, Россия
ФГАУ «Национальный научно-практический центр здоровья детей» Минздрава России, Москва, Россия
ФГАУ «Национальный научно-практический центр здоровья детей» Минздрава России, Москва, Россия
ФГАУ «Национальный научно-практический центр здоровья детей» Минздрава России, Москва, Россия
ФГАУ «Национальный научно-практический центр здоровья детей» Минздрава России, Москва, Россия
ФГАУ «Национальный научно-практический центр здоровья детей» Минздрава России, Москва, Россия
ФГАУ «Национальный научно-практический центр здоровья детей» Минздрава России, Москва, Россия
НИИ антимикробной химиотерапии ФГБОУ ВО СГМУ Минздрава России, Смоленск, Россия
-
1.
Pilishvili T., Lexau C., Farley M., et al. Sustained reductions in invasive pneumococcal disease in the era 283 of conjugate vaccine. J Infect Dis. 2010;201:32-41.
-
2.
Tan T. Pediatric invasive pneumococcal disease in the United States in the era of pneumococcal conjugate vaccines. Clin Microbiol Rev. 2012;25:409- 419.
-
3.
van der Linden M., Falkenhorst G., Perniciaro S., et al. Effects of infant pneumococcal conjugate vaccination on serotype distribution in invasive pneumococcal disease among children and adults in Germany. PLoS One. 2015;10:e0131494.
-
4.
Richter S., Heilmann K., Dohrn C., et al. Pneumococcal serotypes before and after introduction of conjugate vaccines, United States, 1999-2011. Emerg Infect Dis. 2013;19:1074-1083.
-
5.
Hackel M., Lascols C., Bouchillon S., et al. Serotype prevalence and antibiotic resistance in Streptococcus pneumoniae clinical isolates among global populations. Vaccine. 2013;31:4881-4887.
-
6.
Beall B., Gertz R., Hulkower R., et al. Shifting genetic structure of invasive serotype 19A pneumococci in the United States. J Infect Dis. 2011;203:1360-1368.
-
7.
van der Linden M., Reinert R., Kern W., et al. Epidemiology of serotype 19A isolates from invasive pneumococcal disease in German children. BMC Infect Dis. 2013;13:70.
-
8.
Aguiar S., Pinto F., Nunes S., et al. Denmark14-230 clone as an increasing cause of pneumococcal infection in Portugal within a background of diverse serotype 19A lineages. J Clin Microbiol. 2010;48:2 101-108.
-
9.
Reinert R., Jacobs M., Kaplan S. Pneumococcal disease caused by serotype 19A: review of the literature and implications for future vaccine development. Vaccine. 2010;28:4249-4259.
-
10.
Del Grosso M., Camilli R., D’Ambrosio F., et al. Increase of pneumococcal serotype 19A in Italy is due to expansion of the piliated clone ST416/ CC199. J Med Microbiol. 2013;62:1220-1225.
-
11.
Weinberger D., Malley R., Lipsitch M. Serotype replacement in disease after pneumococcal vaccination. Lancet. 2011;378:1962-1973.
-
12.
Choi E., Kim S., Eun B., et al. Streptococcus pneumoniae serotype 19A in children, South Korea. Emerg Infect Dis. 2008;14:275-281.
-
13.
Dagan R., Givon-Lavi N., Leibovitz E., et al. Introduction and proliferation of multidrug-resistant Streptococcus pneumoniae serotype 19A clones that cause acute otitis media in an unvaccinated population. J Infect Dis. 2009;199:776-785.
-
14.
Hsieh Y., Lin T., Chang K., et al. Expansion and evolution of Streptococcus pneumoniae serotype 19A ST320 clone as compared to its ancestral clone, Taiwan19F-14 (ST236). J Infect Dis. 2013;208:203-210.
-
15.
Enright M., Spratt B. A multilocus sequence typing scheme for Streptococcus pneumoniae: identification of clones associated with serious invasive disease. Microbiology. 1998;144:3049-3060.
-
16.
Multilocus sequence typing: Streptococcus pneumoniae [database online]. Available at: http://pubmlst.org/spneumoniae.
-
17.
Henriques-Normark B., Blomberg C., Dagerhamn J., et al. The rise and fall of bacterial clones: Streptococcus pneumoniae. Nat Rev Microbiol. 2008;6:827-837.
-
18.
Moore M., Gertz R. Jr., Woodbury R., et al. Population snapshot of emergent Streptococcus pneumoniae serotype 19A in the United States, 2005. J Infect Dis. 2008;197:1016-1027.
-
19.
Hulten K., Kaplan S., Lamberth L., et al. Changes in Streptococcus pneumoniae serotype 19A 322 invasive infections in children from 1993 to 2011. J Clin Microbiol. 2013;51:1294-1297.
-
20.
Gene A., del Amo E., Inigo M., et al. Pneumococcal serotypes causing acute otitis media among children in Barcelona (1992-2011): emergence of the multiresistant clone ST320 of serotype 19A. Pediatr Infect Dis J. 2013;32:e128-133.
-
21.
Setchanova L., Alexandrova A., Dacheva D., et al. Dominance of multidrugresistant Denmark14-32 (ST230) clone among Streptococcus pneumoniae serotype 19A isolates causing pneumococcal disease in Bulgaria from 1992 to 2013. Microb Drug Resist. 2015;21:35-42.
-
22.
Golden A., Rosenthal M., Fultz B., et al. Characterization of MDR and XDR Streptococcus pneumonia in Canada, 2007-13. J Antimicrob Chemother. 2015;70:2199-2202.
-
23.
Metcalf B., Gertz R. Jr., Gladstone R., et al. Strain features and distributions in pneumococci from children with invasive disease before and after 13-valent conjugate vaccine implementation in the USA. Clin Microbiol Infect. 2016;22(1):60.e9-60.e29.
-
24.
Hakenbeck R., Brückner R., Denapaite D., et al. Molecular mechanisms of β-lactam resistance in Streptococcus pneumoniae. Future Microbiol. 2012;7:395-410.
-
25.
Zähner D., Gudlavalleti A., Stephens D. Increase in pilus islet 2-encoded pili among isolates, Atlanta, Georgia, USA. Emerg Infect Dis. 2010;16:955- 962.
-
26.
Sidorenko S.V, Savinova T.A., Il’ina E.N., Syrochkina M.A. Population structure of pneumococci with reduced sensitivity to penicillin and prospects of antipneumococcal vaccination to contain the spread of antibacterial resistance. Antibiotiki i himioterapija. 2011;5:14-18. Russian. (Сидоренко С.В, Савинова Т.А., Ильина Е.Н., Сырочкина М.А. Популяционная структура пневмококков со сниженной чувствительностью к пенициллину и перспективы антипневмококковой вакцинации для сдерживания распространения антибактериальной резистентности. Антибиотики и химиотерапия. 2011;5:14-18.).
-
27.
Majanskij N.A., Aljab’eva N.M., Lazareva M.A., et al. Antimicorbial Susceptibility, Clonal and Serotype Diversity of Streptococcus pneumoniae Isolated from Children with Acute Otitis Media in Moscow. Klinicheskaja mikrobiologija i antimikrobnaja himioterapija. 2016;18(2):84-92. Russian. (Маянский Н.А., Алябьева Н.М., Лазарева М.А. и соавт. Чувствительность к антибиотикам, клональное и серотиповое разнообразие пневмококков у детей с острым средним отитом в г. Москве. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2016;18(2):84-92.).
-
28.
Mayanskiy N., Alyabieva N., Ponomarenko O., et al. Bacterial etiology of acute otitis media and characterization of pneumococcal serotypes and genotypes among children in Moscow, Russia. Pediatr Infect Dis J. 2015;34:255-260.
-
29.
Stratchounski L., Kozlov R., Appelbaum P., et al. Antimicrobial resistance of nasopharyngeal pneumococci from children from day-care centers and orphanages in Russia: results of a unique prospective multicentre study. Clin Microbiol Infect. 2006;12:853-866.
-
30.
Kozlov R.S., Chagarjan A.N., Kozlova L.V., Murav’ev A.A. Serological Characteristics and Antimicrobial Susceptibility of Streptococcus pneumoniae Isolated from Children 0-5 Years of Age in Different Regions of Russia. Klinicheskaja mikrobiologija i antimikrobnaja himioterapija. 2011;13(2):177-187. Russian. (Козлов Р.С., Чагарян А.Н., Козлова Л.В., Муравьев А.А. Серологическая характеристика и чувствительность к антибиотикам пневмококков, выделенных у детей в возрасте до 5 лет в отдельных регионах Российской Федерации. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2011;13(2):177-187.).
-
31.
Mayanskiy N., Alyabieva N., Ponomarenko O., et al. Serotypes and antibiotic resistance of non-invasive Streptococcus pneumoniae circulating in pediatric hospitals in Moscow, Russia. Int J Infect Dis. 2014;20:58-62.
-
32.
Aguiar S., Serrano I., Pinto F., et al. The presence of the pilus locus is a clonal property among pneumococcal invasive isolates. BMC Microbiol. 2008;8:41.
-
33.
Bagnoli F., Moschioni M., Donati C., et al. A second pilus type in Streptococcus pneumoniae is prevalent in emerging serotypes and mediates adhesion to host cells. J Bacteriol. 2008;190:5480-5492.
-
34.
Gertz R. Jr., McEllistrem M., Boxrud D., et al. Clonal distribution of invasive pneumococcal isolates from children and selected adults in the United States prior to 7-valent conjugate vaccine introduction. J Clin Microbiol. 2003;41:4194-4216.
-
35.
Shouval D., Porat N., Dagan R., et al. Bacteremia caused by a highlyresistant Streptococcus pneumoniae serotype 19A circulating in a daycare center. Int J Infect Dis. 2010;14(Suppl 3):e253-255.
-
36.
Klugman K. The successful clone: the vector of dissemination of resistance in Streptococcus pneumoniae. J Antimicrob Chemother. 2002;50(Suppl S2):1-5.
-
37.
Sjöström K., Blomberg C., Fernebro J., et al. Clonal success of piliated penicillin nonsusceptible pneumococci. Proc Natl Acad Sci USA. 2007;104:12907-12912.
-
38.
McElligott M., Vickers I., Meehan M., et al. Noninvasive pneumococcal clones associated with antimicrobial nonsusceptibility isolated from children in the era of conjugate vaccines. Antimicrob Agents Chemother. 2015;59:5761-5767.
-
39.
Siira L., Jalava J., Kaijalainen T., et al. Antimicrobial resistance in relation to sero- and genotypes among invasive Streptococcus pneumoniae in Finland, 2007-2011. Microb Drug Resist. 2014;20:124-130.
-
40.
Hjálmarsdóttir M., Pétursdóttir B., Erlendsdóttir H., et al. Prevalence of pilus genes in pneumococci isolated from healthy preschool children in Iceland: association with vaccine serotypes and antibiotic resistance. J Antimicrob Chemother. 2015;70:2203-2208.
-
41.
Moore M., Link-Gelles R., Schaffner W., et al. Effectiveness of 13-valent pneumococcal conjugate vaccine for prevention of invasive pneumococcal disease in children in the USA: a matched case-control study. Lancet Respir Med. 2016;4:399-406.
-
42.
van der Linden M., Falkenhorst G., Perniciaro S., et al. Effectiveness of pneumococcal conjugate vaccines (PCV7 and PCV13) against invasive pneumococcal disease among children under two years of age in Germany. PLoS One. 2016;11:e0161257.
-
43.
Biesbroek G., Wang X., Keijser B., et al. Seven-valent pneumococcal conjugate vaccine and nasopharyngeal microbiota in healthy children. Emerg Infect Dis. 2014;20:201-210.
-
44.
Galanis I., Lindstrand A., Darenberg J., et al. Effects of PCV7 and PCV13 on invasive pneumococcal disease and carriage in Stockholm, Sweden. Eur Respir J. 2016;47:1208-1218.