Аннотация
Staphylococcus aureus известен как ведущий инфекционный агент при внутрибольничных инфекциях и самый частый возбудитель инфекций кожи и мягких тканей человека. Цель данного исследования — определение генетической структуры метициллиночувствительных изолятов S. aureus, выделенных от больных детей и носителей (медицинского персонала и посетителей) при локальной внутрибольничной вспышке эксфолиативного дерматита. Изоляты S. aureus изучали методами spa-, MLST-, coa- и agr-типирования, а также определяли наличие 11 генов токсинов. Показано, что все изоляты от больных детей идентичны и представляют собой штамм S. aureus t272 (ST121). Особенностью генома данного штамма является наличие двух генов эксфолиативных токсинов eta и etb и кассеты энтеротоксиновых генов egc. Результаты анализа структуры генома штамма S. aureus t272 (ST121) свидетельствуют о клональном родстве этого штамма с циркулирующими во Франции штаммами и о различии со штаммами, циркулирующими в Японии и Китае. Изоляты, выделенные от медицинского персонала и посетителей, были разделены на 9 генетических вариантов S. aureus. Один изолят, S. aureus t284 (ST121), относится к генетической линии, которая может вызывать стафилодермию, но в его геноме отсутствуют основные детерминанты вирулентности, ответственные за патогенез инфекции. Остальные выделенные от носителей изоляты относятся к 8 генетическим вариантам S. aureus, которые не выявляются среди штаммов, вызывающих эксфолиативный дерматит. Большинство этих изолятов относится к таким известным клонам S. aureus, как t002 (ST5), t012 (ST30) и t015 (ST45), которые характеризуются повышенной вирулентностью, высокой частотой горизонтального переноса SCCmec-кассет и генов токсинов. Все выявленные в исследовании изоляты S. aureus t012 (ST30) несут ген токсина синдрома токсического шока, часть из них несёт также ген лейкоцидина Пантона-Валентайна.
-
1.
Lowy F.D. Staphylococcus aureus infections. N Engl J Med 1998; 339(8):520-32.
-
2.
Jarraud S., Mougel C., Thioulouse J., et al. Relationships between Staphylococcus aureus genetic background, virulence factors, agr groups(alleles), and human disease. Infect Immun 2002; 70(2):631-41.
-
3.
Wehrhahn M.C., Robinson J. O., Pascoe E.M., et al. Illness severity in community-onset invasive Staphylococcus aureus infection and the presence of virulence genes. J Infect Dis 2012; 205(12):1840-8.
-
4.
Monecke S., Slickers P., and Ehricht R. Assignment of Staphylococcus aureus isolates to clonal complexes based on microarray analysis and pattern recognition. FEMS Immunol Med Microbiol 2008; 53(2):237-51.
-
5.
Lamand V., Dauwalder O., Tristan A., et al. Epidemiological data of staphylococcal scalded skin syndrome in France from 1997 to 2007 and microbiological characteristics of Staphylococcus aureus associated strains. Clin Microbiol Infect 2012; 18(12):E514-21.
-
6.
Wertheim H.F., Melles D.C., Vos M.C., et al. The role of nasal carriage in Staphylococcus aureus infections. Lancet Infect Dis 2005; 5(12):751-62.
-
7.
МУК № 4.2.1890-04 Методические указания. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. М., 2004.
-
8.
Hookey J.V., Richardson J.F., Cookson B.D. Molecular typing of Staphylococcus aureus based on PCR restriction fragment length polymorphism and DNA sequence analysis of the coagulase gene. J Clin Microbiol 1998; 36(4):1083-9.
-
9.
Zhang K., Sparling J., Chow B.L., et al. New quadriplex PCR assay for detection of methicillin and mupirocin resistance and simultaneous discrimination of Staphylococcus aureus from coagulase-negative staphylococci. J Clin Microbiol 2004; 42(11):4947-55.
-
10.
Schouls L.M., Spalburg E.C., van Luit M., et al. Multiple-locus variable number tandem repeat analysis of Staphylococcus aureus: comparison with pulsed-field gel electrophoresis and spa-typing. PLoS ONE 2009; 4(4):e5082.
-
11.
Gilot P., Lina G., Cochard T., Poutrel B. Analysis of the genetic variability of genes encoding the RNA IIIactivating components Agr and TRAP in a population of Staphylococcus aureus strains isolated from cows with mastitis. J Clin Microbiol 2002; 40(11):4060-7.
-
12.
Makgotlho P.E., Kock M.M., Hoosen A., et al. Molecular identification and genotyping of MRSA isolates. FEMS Immunol Med Microbiol 2009; 57(2):104-15.
-
13.
Takano T., Higuchi W., Otsuka T., et al. Novel characteristics of community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains belonging to multilocus sequence type 59 in Taiwan. Antimicrob Agents Chemother 2008; 52(3):837-45.
-
14.
Fei W., Hongjun Y., Hong-bin H., et al. Study on the hemolysin phenotype and the genetype distribution of Staphylococcus aureus caused bovine mastitis in Shandong dairy farms. Intern J Appl Res Vet Med 2011; 9(4):416-21.
-
15.
Mehrotra M., Wang G., Johnson W.M. Multiplex PCR for detection of genes for Staphylococcus aureus enterotoxins, exfoliative toxins, toxic shock syndrome toxin 1, and methicillin resistance. J Clin Microbiol 2000; 38(3):1032-35.
-
16.
Xie Y., He Y., Gehring A., et al. Genotypes and toxin gene profiles of Staphylococcus aureus clinical isolates from China. PLoS One 2011; 6(12): e28276.
-
17.
Okuma K., Iwakawa K., Turnidge J.D., et al. Dissemination of new methicillin-resistant Staphylococcus aureus clones in the community. J Clin Microbiol 2002; 40(11):4289-94.
-
18.
Nishifuji K., Sugai M., Amagai M. Staphylococcal exfoliative toxins: «molecular scissors» of bacteria that attack the cutaneous defense barrier in mammals. J Dermatol Sci 2008; 49(1):21-31.
-
19.
Kato F., Kadomoto N., Iwamoto Y, Bunai K., Komatsuzawa H., Sugai M. Regulatory mechanism for exfoliative toxin production in Staphylococcus aureus. Infect Immun 2011; 79(4):1660-70.
-
20.
Nakaminami H., Noguchi N., Ikeda M., et al. Molecular epidemiology and antimicrobial susceptibilities of 273 exfoliative toxin-encoding-gene-positive Staphylococcus aureus isolates from patients with impetigo in Japan. J Med Microbiol 2008; 57(Pt 10):1251-8.
-
21.
Yamaguchi T., Yokota Y., Terajima J., et al. Clonal association of Staphylococcus aureus causing bullous impetigo and the emergence of new methicillin-resistant clonal groups in Kansai district in Japan. J Infect Dis 2002; 185(10):1511-6.
-
22.
Shi D., Higuchi W., Takano T., et al. Bullous impetigo in children infected with methicillin-resistant Staphylococcus aureus alone or in combination with methicillin-susceptible S. aureus: analysis of genetic characteristics, including assessment of exfoliative toxin gene carriage. J Clin Microbiol 2011; 49(5):1972-74.
-
23.
Yamasaki O., Yamaguchi T., Sugai M., et al. Clinical manifestations of staphylococcal scalded-skin syndrome depend on serotypes of exfoliative toxins. J Clin Microbiol 2005; 43(4):1890-3.
-
24.
Enright M. C., Robinson D. A., Randle G., Feil E. J., Grundmann H., Spratt B.G. The evolutionary history of methicillin-resistant Staphylococcus aureus(MRSA). Proc Natl Acad Sci U S A 2002; 99(11):7687-92.
-
25.
Gomes A.R., Westh H., de Lencastre H. Origins and evolution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus clonal lineages. Antimicrob Agents Chemother 2006; 50(10):3237-44.