Аннотация
Проведено in vitro исследование чувствительности штаммов Acinetobacter baumannii и Pseudomonas aeruginosa, выделенных от пациентов с нозокомиальными инфекциями в отделениях реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) 31 лечебно-профилактического учреждения России (в рамках проекта «РЕЗОРТ»), к следующим антибиотикам: пиперациллину, пиперациллину/тазобактаму, цефтазидиму, цефепиму, цефоперазону, цефоперазону/сульбактаму, имипенему, меропенему, ципрофлоксацину, левофлоксацину, гентамицину, амикацину и полимиксину В (для P.aeruginosa). Наибольшей активностью в отношении исследованных штаммов A.baumannii обладали цефоперазон/сульбактам, имипенем и меропенем, устойчивыми к которым были только 2,2, 2,2 и 3,5% штаммов соответственно. Наименьшей активностью обладали цефоперазон, гентамицин и пиперациллин, нечувствительными к которым были 97,8, 89,1 и 91,7% исследованных штаммов соответственно. Нечувствительными к пиперациллину/тазобактаму были 74,7% штаммов. Pseudomonas aeruginosa характеризовалась высокой частотой резистентности ко всем антибиотикам, за исключением полимиксина B, нечувствительными к которому были 5,8% штаммов. Из остальных антибиотиков наибольшая активность отмечена у имипенема, меропенема, пиперациллина/тазобактама и амикацина. Нечувствительными к имипенему и меропенему были 39,0 и 41,4% штаммов соответственно. Резистентными к амикацину и пиперациллину/тазобактаму были 41,6 и 42,4% штаммов соответственно. Нечувствительными к цефтазидиму были 47,9% штаммов P.aeruginosa, к остальным цефалоспоринам устойчивыми были от 58,6 до 72,6% штаммов. Фторхинолоны обладали низкой in vitro активностью при нечувствительности >65% штаммов P.aeruginosa.
-
1.
National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: 14th informational supplement. NCCLS document M100-S14. 2004. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, PA.
-
2.
Comite de l’antibiogramme de la Societe Francaise de Microbiologie. Report 2003.
-
3.
Bronzwaer S.L.A.M., Goettsch W., Ollson-Liljequist B., Weil M.C.J., Vatopoulos A.C., Sprenger M.J.W. European Antimicrobial Resistance Surveillance System (EARSS): objectives and organization. Eurosurveillance 1999; 4: 4: 41.
-
4.
Bergogne-Berezin E., Towner K.J. Acinetobacter spp. as nosocomial pathogens: microbiological, clinical, and epidemiological features. Clin Microbiol Rev 1996; 9:148-165.
-
5.
Navon-Venezia S., Ben-Ami R., Carmeli Y. Update on Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii infections in the healthcare setting. Curr Opin Infect Dis 2005; 18: 306-313.
-
6.
Karlowsky J.A., Draghi D.C., Jones M.E., Thornsberry C., Friedland I.R., Sahm D.F. Surveillance for Antimicrobial Susceptibility among Clinical Isolates of Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii from Hospitalized Patients in the United States, 1998 to 2001. Antimicrob Agents Chemother 2003: 47: 1681–1688.
-
7.
Clark R.B. Imipenem resistance among Acinetobacter baumannii: association with reduced expression of a 33-36 kDa outer membrane protein. J Antimicrob Chemother 1996; 38: 245-251.
-
8.
Gehrlein M., Leying H., Cullmann W., Wendt S., Opferkuch W. Imipenem resistance in Acinetobacter baumannii is due to altered penicillin-binding proteins. Chemotherapy 1991; 37: 405-412.
-
9.
Van Looveren M., Goossens H., ARPAC Steering Group. Antimicrobial resistance of Acinetobacter spp. in Europe. Clin Microbiol Infect 2004; 10: 684-704.
-
10.
Turner P.J., Greenhalgh J.M.; MYSTIC Study Group (Europe). The activity of meropenem and comparators against Acinetobacter strains isolated from European hospitals, 1997-2000. Clin Microbiol Infect 2003; 9: 563-567.
-
11.
Gupta V., Datta P., Agnihotri N., Chander J. Comparative in vitro activities of seven new beta-lactams, alone and in combination with beta-lactamase inhibitors, against clinical isolates resistant to third generation cephalosporins. Braz J Infect Dis 2006; 10: 22-25.
-
12.
Ishii Y., Alba J., Kimura S., Yamaguchi K. Evaluation of antimicrobial activity of beta-lactam antibiotics by Etest against clinical isolates from 100 medical centers in Japan (2004). Diagn Microbiol Infect Dis 2006; 55: 143-148.
-
13.
Yamaguchi K., Mathai D., Biedenbach D.J., Lewis M.T., Gales A.C., Jones R.N. Evaluation of the in vitro activity of six broad-spectrum beta-lactam antimicrobial agents tested against over 2,000 clinical isolates from 22 medical centers in Japan. Japan Antimicrobial Resistance Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis 1999; 34: 123-134.
-
14.
Fu W., Demei Z., Shi W., Fupin H., Yingyuan Z. The susceptibility of non-fermentative Gram-negative bacilli to cefoperazone and sulbactam compared with other antibacterial agents. Int J Antimicrob Agents. 2003 Oct;22(4):444-448.
-
15.
Wang H., Chen M.J., on behalf of China Nosocomial Pathogens Resistance Surveillance Study Group. Changes of antimicrobial resistance among non-fermenting gram-negative bacilli isolated from intensive care units from 1994 to 2001 in China. Zhonghua Yi Xue Za Zhi 2003; 83: 385-390.
-
16.
Pfaller M.A., Korten V., Jones R.N., Doern G.V. Multicenter evaluation of the antimicrobial activity for seven broad-spectrum beta-lactams in Turkey using the Etest method. Turkish Antimicrobial Resistance Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis 1999; 35: 65-73.
-
17.
Jones R.N., Salazar J.C., Pfaller M.A., Doern G.V. Multicenter evaluation of antimicrobial resistance to six broad-spectrum beta-lactams in Colombia using the Etest method. The Colombian Antimicrobial Resistance Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis 1997; 29: 265-272.
-
18.
Unal S., Garcia-Rodriguez J.A. Activity of meropenem and comparators against Pseudomonas aeruginosa and Acinteobacter spp. isolated in the MYSTIC Program, 2002-2004. Diagn Microbiol Infect Dis 2005; 53: 256-271.
-
19.
Schmitz F-J., Verhoef J., Fluit A.C and the SENTRY Participants Group. Prevalence of aminoglycoside resistance in 20 European University hospitals participating in the European SENTRY antimicrobial surveillance programme. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1999; 18: 414-421.
-
20.
Jones R.N., Sader H.S., Beach M.L. Contemporary in vitro spectrum of activity summary for antimicrobial agents tested against 18569 strains non-fermentative Gram-negative bacilli isolated in the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (1997-2001). Int J Antimicrob Agents 2003; 22: 551-556.
-
21.
Devaud M., Kayser F.H., Bachi B. Transposon-mediated multiple antibiotic resistance in Acinetobacter strains. Antimicrob Agents Chemother 1982; 22: 323-329.
-
22.
Murray B.E., Moellering R.C.Jr. Evidence of plasmid-mediated production of aminoglycoside-modifying enzymes not previously described in Acinetobacter. Antimicrob Agents Chemother 1980; 17: 30-36.
-
23.
Решедько Г.К. Механизмы резистентности к аминогликозидам у нозокомиальных грамотрицательных бактерий в России: результаты многоцентрового исследования. Клин Микроб Антимикроб Химиотер 2001; 3: 111-125.
-
24.
Schmitz F.J., Verhoef J., Fluit A.C. Comparative activities of six different fluoroquinolones against 9,682 clinical bacterial isolates from 20 European university hospitals participating in the European SENTRY surveillance programme. The SENTRY participants group. Int J Antimicrob Agents 1999; 12: 311-317.
-
25.
Drlica K., Zhao X. DNA gyrase, topoisomerase IV, and the 4-quinolones. Microbiol Mol Biol Rev 1997; 61: 377-392.
-
26.
Vila J, Ruiz J, Goni P, Marcos A, Jimenez de Anta T. Mutation in the gyrA gene of quinolone-resistant clinical isolates of Acinetobacter baumannii. Antimicrob Agents Chemother. 1995 May;39(5):1201-1203
-
27.
Piddock L.J. Mechanisms of resistance to fluoroquinolones: state-of-the-art 1992-1994. Drugs 1995; 49 Suppl 2: 29-35.
-
28.
Vila J., Ruiz J., Goni P., Jimenez de Anta T. Quinolone-resistance mutations in the topoisomerase IV parC gene of Acinetobacter baumannii. J Antimicrob Chemother 1997; 39: 757-762.
-
29.
Blondeau J.M. Expanded activity and utility of the new fluoroquinolones: a review. Clin Ther 1999; 21: 3-40.
-
30.
Страчунский Л.С., Решедько Г.К., Рябкова Е.Л., Стеюк О.У., Кречикова О.И., Суина З.М., Андреева А.С. и др. Рекомендации по оптимизации антимикробной терапии нозокомиальных инфекций, вызванных грамотрицательными бактериями в отделениях реанимации и интенсивной терапии. Клин Микроб Антимикроб Химиотер 2002; 4: 379-390.
-
31.
Gales AC, Jones RN, Sader HS. Global assessment of the antimicrobial activity of polymyxin B against 54 731 clinical isolates of Gram-negative bacilli: report from the SENTRY antimicrobial surveillance programme (2001-2004). Clin Microbiol Infect 2006; 12: 315-321.
-
32.
Livermore D.M. Multiple mechanisms of antimicrobial resistance in Pseudomonas aeruginosa: our worst nightmare? Clin Infect Dis 2002; 34: 634-640.
-
33.
Poirel L., Weldhagen G.F., Naas T., De Champs C., Dove M.G., Nordmann P. GES-2, a class A beta-lactamase from Pseudomonas aeruginosa with increased hydrolysis of imipenem. Antimicrob. Agents Chemother 2001; 45; 2598–2603.
-
34.
Weldhagen G.F., Poirel L., Nordmann P. Ambler class A extended-spectrum beta-lactamases in Pseudomonas aeruginosa: novel developments and clinical impact. Antimicrob Agents Chemother 2003; 47: 2385-2392.
-
35.
Watanabe M., Iyobe S., Inoue M., Mitsuhashi S. Transferable imipenem resistance in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother 1991; 35: 147-151.
-
36.
Walsh T.R., Toleman M.A., Poirel L., Nordmann P. Metallo-β-lactamases: the quiet before the storm? Clin Microbiol Rev 2005; 18: 306-325.
-
37.
Obritsch M.D., Fish D.N., MacLaren R., Jung R. National Surveillance of Antimicrobial Resistance in Pseudomonas aeruginosa Isolates Obtained from Intensive Care Unit Patients from 1993 to 2002. Antimicrob Agents Chemother 2004; 48: 4606–4610.
-
38.
Coleman K., Athalye M., Clancey A., Davison M., Payne D.J., Perry C.R., Chopra I. Bacterial resistance mechanisms as therapeutic targets. J Antimicrob Chemother 1994; 33: 1091-116.
-
39.
Miller G.H., aminoglycoside resistance study groups. Resistance to aminoglycosides in Pseudomonas. Trends in Microbiol 1994; 2:347-353.
-
40.
Страчунский Л.С., Решедько Г.К., Стецюк О.У., Андреева А.С., Щебников А.Г., исследовательская группа РОСНЕТ. Сравнительная активность антисинегнойных антибиотиков в отношении нозокомиальных штаммов Pseudomonas aeruginosa, выделенных в отделениях реанимации и интенсивной терапии России. Клин Микроб Антимикроб Химиотер 2003; 5: 35-46.