Эпидемиология антибиотикорезистентности нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в России: результаты многоцентрового исследования

Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2002; 4(4):325-336

​ Дехнич А.В., Эйдельштейн И.А., Нарезкина А.Д., Афиногенов Г.Е., Ахметова Л.И., Боронина Л.Г., Гугуцидзе Е.Н., Гудкова Л.В., Здзитовецкий Д.Э., Ильина В.Н., Кречикова О.И., Марусина Н.Е., Мултых И.Г., Пылаева С.И., Смирнов И.В., Суборова Т.Н., Тарабан В.К., Фурлетова Н.М., Хасанова С.Г., Щетинин Е.В., Страчунский Л.С.
Staphylococcus aureus антибиотикорезистентность нозокомиальные инфекции MRSA ванкомицин линезолид мупироцин фузидиевая кислота
Раздел
Антибиотикорезистентность
Тип
Журнальная статья
Публикация
Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2002; 4(4):325-336

Цель.

Цель исследования – изучить активность антимикробных препаратов в отношении клинических штаммов S.aureus, выделенных у пациентов, госпитализированных в стационары различных регионов России.

Материалы и методы.

В исследование были включены 879 клинических штаммов S.aureus, выделенных в 2000–2001 гг. у пациентов, госпитализированных в 17 стационаров различных регионов России. Чувствительность к 18 антимикробным препаратам (оксациллин, ванкомицин, тейкопланин, гентамицин, эритромицин, клиндамицин, линкомицин, линезолид, ципрофлоксацин, левофлоксацин, моксифлоксацин, мупироцин, рифампицин, тетрациклин, триметоприм/сульфаметоксазол, фузидиевая кислота, хинупристин/дальфопристин, хлорамфеникол) была определена методом разведений в агаре в соответствии с рекомендациями Национального комитета по клиническим лабораторным стандартам США (NCCLS).

Результаты.

Наиболее активными антибиотиками были гликопептиды (ванкомицин и тейкопланин), линезолид и фузидиевая кислота, к которым были чувствительны все исследованные штаммы. Высокой активностью обладали также мупироцин, ко-тримоксазол, хинупристин/дальфопристин и рифампицин (0,3, 0,8, 1,9 и 4,1% штаммов были нечувствительны соответственно). Фторхинолоны обладали умеренной активностью. Высокая частота резистентности была отмечена для клиндамицина (27,1%), гентамицина (30,7%), тетрациклина (37,1%), эритромицина (39,6%) и хлорамфеникола (43,1%). Частота метициллинорезистентности составила 33,5%. Наиболее часто MRSA выделялись в ожоговых отделениях (77,5%), отделениях реанимации и интенсивной терапии (54,8%), травматологии и ортопедии (42,1%) Все MRSA были чувствительны к ванкомицину, тейкопланину, линезолиду, фузидиевой кислоте, мупироцину. Высокой активностью также обладал триметоприм/сульфаметоксазол.

Выводы.

(1) В отделениях с низкой частотой MRSA (терапевтического и общехирургического профилей) в качестве препаратов выбора при S.aureus инфекциях могут использоваться антистафилококковые β-лактамы, в качестве альтернативы – клиндамицин и линезолид. (2) В отделениях с высокой частотой MRSA (ожоговых, реанимации и интенсивной терапии, травматологических) в качестве препарата выбора может использоваться ванкомицин, альтернатива – линезолид и комбинация фузидина с ко-тримоксазолом. (3) Для местной терапии поверхностных стафилококковых инфекций в стационарах препаратами выбора являются мупироцин и фузидин. (4) Необходимо резко ограничить применение в стационарах макролидов, тетрациклинов и особенно хлорамфеникола.

  • 1. Gardner P., Carles D.G. Infections acquired in a pediatrichospital. J Pediatr 1972; 81:1205-10.
  • 2. Emori T.G., Gaynes R.P. An overview of nosocomialinfections, including the role of the microbiology labora-tory. Clin Microbiol Rev 1993; 6:428-42.
  • 3. Mandell L.A. In: Mandell G.L., Bennett J.E., Raphael D.,editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles andpractice of infectious diseases. 5th ed. Philadelphia:Churchill Livingston; 2000. p. 306-7.
  • 4. Jorgensen J.H. Laboratory and epidemiologic experiencewith methicillin-resistantStaphylococcus aureusin theUSA. Eur J Clin Microbiol 1986; 5:693-6.
  • 5. Kallen A., Driscoll T., Thornton S., Olson P., Wallace M.Increase in community-acquired methicillin-resistantStaphylococcus aureusat a naval medical center. InfectControl Hosp Epidemiol 2000; 21:223-6.
  • 6. O’Brien F., Pearman J., Gracey M., Riley T., Grubb W.Community strain of methicillin-resistantStaphylo!coccus aureusinvolved in a hospital outbreak.J Clin Microbiol 1999; 37:2858-62.
  • 7. Gosbell I.B., Mercer J.L., Neville S.A., Chant K.G.,Munro R. Community-acquired, non-multiresistantoxacillin-resistantStaphylococcus aureus(NORSA) insouth western Sydney. Pathology 2001; 33:206-10.
  • 8. Presterl E., Mueller-Uri P., Grisold A., Georgopoulos A.,Graninger W. Ciprofloxacin- and methicillin-resistantStaphylococcus aureussusceptible to moxifloxacin, le-vofloxacin, teicoplanin, vamcomycin and linezolid. Eur JClin Microbiol Infect Dis 2001; 20:486-9.
  • 9. National Committee for Clinical Laboratory Standards.Performance standards for antimicrobial susceptibilitytesting; Twelfth informational supplement. NCCLSDocument M100-S4. 2002; 22(1).
  • 10. Statement 1996 CA-SFM. Zone sizes and MIC break-points for non-fastidious organisms. Clin MicrobiolInfect 1996; 2 (Suppl 1):46-9.
  • 11. Богданович Т.М., Страчунский Л.С. Мупироцин:уникальный антибиотик для местного применения.Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия 1999;1(1):57-65.
  • 12. Turnidge J., Collignon P. Resistance to fusidic acid. Int JAntimicrob Agents 1999; 12 (Suppl 2):35–44.
  • 13. Samra Z., Gadba R., Ofir O. Antibiotic susceptibility andphage typing of methicillin-resistant and sensitiveStaphylococcus aureusclinical isolates at the period du-ring 1991–1997. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2001;20:425-7.
  • 14. O’Neill A.J., Cove J.H., Chopra I. Mutation frequenciesfor resistance to fusidic acid and rifampicin inStaphylococcus aureus. J Antimicrob Chemother 2001;47:647-50.
  • 15. Schmitz F.-J., Fluit A.C., Hafner D., et al. Developmentof resistance to ciprofloxacin, rifampin, and mupirocin inmethicillin-susceptible and -resistantStaphylococcusaureusisolates. Antimicrob Agent Chemother 2000;44:3229-31.
  • 16. Kochman M., Fordymacki P., Lawrynowicz-Pacior M.,et al. Susceptibility to selected chemotherapeuticsStaphylococcus aureusstrains resistant to methicillin iso-lated from clinical materials in the years 1991–1992 and1997. Med Dosw Microbiol 1999; 51:187-98.
  • 17. Perez-Fontan M., Rosales M., Rodriguez-Carmona A.,Falcon T.G., Valdes F. Mupirocin resistance after long-term use forStaphylococcus aureuscolonization inpatients undergoing chronic peritoneal dialysis. Am JKidney Dis 2002; 39:337-41.
  • 18. Swarz M.N. Use of antimicrobial agents and drug resis-tance. N Engl J Med 1997; 337:491-2.
  • 19. Nishijima S., Kurokawa I. Antimicrobial resistance ofStaphylococcus aureusisolated from skin infections. Int JAntimicrob Agents 2002; 19:241-3.
  • 20. Guerin F., Buu-Hoi A., Mainardi J.-L., et al. Outbreak ofmethicillin-resistantStaphylococcus aureuswith reducedsusceptibility to glycopeptides in Parisian hospital. J ClinMicrobiol 2000; 38:2985-8.
  • 21. Rohani M.Y., Raudzah A., Lau M.G., et al. Susceptibilitypattern ofStaphylococcus aureusisolated in Malaysianhospitals. Int J Antimicrob Agents 2000; 13:209-13.
  • 22. Hamilton-Miller J.M.T., Shah S. Patterns of phenotypicresistance to the macrolides-lincosamide-ketolide-strep-togramin group of antibiotics in staphylococci.J Antimicrob Chemother 2000; 46:941-9.
  • 23. Kantzanou M., Tassios P.T., Tseleni-Kotsovili A., et al.A multi-centre study of nosocomial methicillin-resistantStaphylococcus aureusin Greece. Int J Antimicrob Agent1999; 12:115–9.
Просмотров
0 Аннотация
0 PDF
0 Цитирования
Поделились