Аннотация
Candidozyma auris (до 2024 г. – Candida auris) – микромицет, включенный Всемирной организацией здравоохранения в список приоритетных грибковых патогенов и характеризующийся высокой резистентностью к антимикотикам. Глубокий («deep-seated») инвазивный кандидоз, вызванный C. auris и удовлетворяющий критериям «доказанного» по EORTC/MSGERC 2020 г. и FUNDICU 2024 г., в мировой литературе описан крайне ограниченно; данных о применении резафунгина при этой нозологии практически нет. Резафунгин – эхинокандин второго поколения с пролонгированным периодом полувыведения, зарегистрированный FDA (март 2023 г.) и EMA (декабрь 2023 г.) для терапии кандидемии и инвазивного кандидоза у взрослых; в России препарат не зарегистрирован. Описан клинический случай 46-летнего пациента с диссеминированным почечно-клеточным раком, перенесшего многократные оперативные вмешательства в связи с осложнениями опухолевого процесса и развившего кандидемию и доказанный глубокий инвазивный кандидоз C. auris с диссеминированным абдоминальным поражением (абсцесс ложа удаленной селезенки, абсцессы печени, перитонит). Несмотря на длительную комбинированную антимикотическую терапию (каспофунгин, липидный комплекс амфотерицина В, анидулафунгин) и поэтапную хирургическую санацию, отмечалось прогрессирование инфекционного процесса с формированием новых жидкостных образований и абсцессов. В связи с прогрессированием заболевания было принято решение о применении резафунгина в индивидуальном порядке по жизненным показаниям; назначение препарата согласовано врачебной комиссией и одобрено локальным комитетом по этике. На фоне терапии резафунгином (нагрузочная доза 400 мг внутривенно в 1-е сутки, далее 200 мг внутривенно 1 раз в неделю) достигнута клинико-лабораторная стабилизация состояния и микробиологическая эрадикация C. auris из контролируемых локусов; общая продолжительность курса резафунгина составила 12 недель. По имеющимся у авторов данным, это первое опубликованное клиническое наблюдение применения резафунгина для лечения инвазивного микоза в России.
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ГБУ «НИИ организации здравоохранения и медицинского менеджмента ДЗМ», Москва, Россия
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ГБУЗ «Московский клинический научно-исследовательский центр Больница 52 ДЗМ», Москва, Россия
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия
-
1.
Satoh K., Makimura K., Hasumi Y., Nishiyama Y., Uchida K., Yamaguchi H. Candida auris sp. nov., a novel ascomycetous yeast isolated from the external ear canal of an inpatient in a Japanese hospital. Microbiol Immunol. 2009;53(1):41-44.
DOI: 10.1111/j.1348-0421.2008.00083.x
-
2.
Lockhart S.R., Etienne K.A., Vallabhaneni S., Farooqi J., Chowdhary A., Govender N.P., et al. Simultaneous emergence of multidrug-resistant Candida auris on 3 continents confirmed by whole-genome sequencing and epidemiological analyses. Clin Infect Dis. 2017;64(2):134-140.
DOI: 10.1093/cid/ciw691
-
3.
Kim H.Y., Nguyen T.A., Kidd S., Chambers J., AlastrueyIzquierdo A., Shin J.H., et al. Candida auris – a systematic review to inform the World Health Organization fungal priority pathogens list. Med Mycol. 2024;62(6):myae042.
DOI: 10.1093/mmy/myae042
-
4.
WHO fungal priority pathogens list to guide research, development and public health action. Geneva: World Health Organization; 2022. 48 p.
-
5.
Liu F., Hu Z.-D., Zhao X.-M., Zhao W.-N., Feng Z.-X., Yurkov A., et al. Phylogenomic analysis of the Candida auris-Candida haemuli clade and related taxa in the Metschnikowiaceae, and proposal of thirteen new genera, fifty-five new combinations and nine new species. Persoonia. 2024;52:22-43.
DOI: 10.3767/persoonia.2024.52.02
-
6.
Chowdhary A., Prakash A., Sharma C., Kordalewska M., Kumar A., Sarma S., et al. A multicentre study of antifungal susceptibility patterns among 350 Candida auris isolates (2009-17) in India: role of the ERG11 and FKS1 genes in azole and echinocandin resistance. J Antimicrob Chemother. 2018;73(4):891-899.
DOI: 10.1093/jac/dkx480
-
7.
Du H., Bing J., Hu T., Ennis C.L., Nobile C.J., Huang G. Candida auris: epidemiology, biology, antifungal resistance, and virulence. PLoS Pathog. 2020;16(10):e1008921.
DOI: 10.1371/journal.ppat.1008921
-
8.
Vasilyeva N.V., Pchelin I.M., Ryabinin I.A., Bogomolova T.S., Stepanova A.A., Goryunov A.S., et al. Population structure based on microsatellite length polymorphism, antifungal susceptibility profile, and enzymatic activity of Candida auris clinical isolates in Russia. J Fungi (Basel). 2025;11(1):65.
DOI: 10.3390/jof11010065
-
9.
Kordalewska M., Lee A., Park S., Berrio I., Chowdhary A., Zhao Y., Perlin D.S. Understanding echinocandin resistance in the emerging pathogen Candida auris. Antimicrob Agents Chemother. 2018;62(6):e00238-18.
DOI: 10.1128/AAC.00238-18
-
10.
Jacobs S.E., Jacobs J.L., Dennis E.K., Taimur S., Rana M., Patel D., et al. Candida auris pan-drug-resistant to four classes of antifungal agents. Antimicrob Agents Chemother. 2022;66(7):e00053-22.
DOI: 10.1128/aac.00053-22
-
11.
Donnelly J.P., Chen S.C., Kauffman C.A., Steinbach W.J., Baddley J.W., Verweij P.E., et al. Revision and update of the consensus definitions of invasive fungal disease from the European Organization for Research and Treatment of Cancer and the Mycoses Study Group Education and Research Consortium. Clin Infect Dis. 2020;71(6):1367-1376.
DOI: 10.1093/cid/ciz1008
-
12.
Bassetti M., Giacobbe D.R., Agvald-Ohman C., Akova M., Alastruey-Izquierdo A., Arikan-Akdagli S., et al. Invasive Fungal Diseases in Adult Patients in Intensive Care Unit (FUNDICU): 2024 consensus definitions from ESGCIP, EFISG, ESICM, ECMM, MSGERC, ISAC, and ISHAM. Intensive Care Med. 2024;50(4):502-515.
DOI: 10.1007/s00134-024-07341-7
-
13.
Cortegiani A., Misseri G., Fasciana T., Giammanco A., Giarratano A., Chowdhary A. Epidemiology, clinical characteristics, resistance, and treatment of infections by Candida auris. J Intensive Care. 2018;6:69.
DOI: 10.1186/s40560-018-0342-4
-
14.
Spivak E.S., Hanson K.E. Candida auris: an emerging fungal pathogen. J Clin Microbiol. 2018;56(2):e01588-17.
DOI: 10.1128/JCM.01588-17
-
15.
Cortegiani A., Misseri G., Giarratano A., Bassetti M., Eyre D. The global challenge of Candida auris in the intensive care unit. Crit Care. 2019;23(1):150.
DOI: 10.1186/s13054-019-2449-y
-
16.
Sandison T., Ong V., Lee J., Thye D. Safety and pharmacokinetics of CD101 IV, a novel echinocandin, in healthy adults. Antimicrob Agents Chemother. 2017;61(2):e01627-16.
DOI: 10.1128/AAC.01627-16
-
17.
Thompson G.R. 3rd, Soriano A., Cornely O.A., Kullberg B.J., Kollef M., Vazquez J., et al. Rezafungin versus caspofungin for treatment of candidaemia and invasive candidiasis (ReSTORE): a multicentre, double-blind, double-dummy, randomised phase 3 trial. Lancet. 2023;401(10370):49-59.
DOI: 10.1016/S0140-6736(22)02324-8
-
18.
European Medicines Agency. Rezzayo (rezafungin): EPAR – product information. Amsterdam: EMA; 2023. Available at: www.ema.europa.eu/en/medicines/human/EPAR/rezzayo. Accessed January 2026.
-
19.
Berkow E.L., Lockhart S.R. Activity of CD101, a longacting echinocandin, against clinical isolates of Candida auris. Diagn Microbiol Infect Dis. 2018;90(3):196-197.
DOI: 10.1016/j.diagmicrobio.2017.10.021
-
20.
Arendrup M.C., Jorgensen K.M., Hare R.K., Chowdhary A. In vitro activity of ibrexafungerp (SCY-078) against Candida auris isolates as determined by EUCAST methodology and comparison with activity against C. albicans and C. glabrata and with the activities of six comparator agents. Antimicrob Agents Chemother. 2020;64(3):e02136-19.
DOI: 10.1128/AAC.02136-19
-
21.
Govrins M., Lass-Flörl C., Ostrosky-Zeichner L., Soriano A., Sandison T., Boulware D.R., Thompson G.R. 3rd. Activity of rezafungin against Candida auris. J Antimicrob Chemother. 2025;80(6):1482-1490.
DOI: 10.1093/jac/dkaf118
-
22.
Keck J.M., Dare R.K., Jenkins M.B., Rico J.C., Kothari A., Bradsher R.W. It’s here, it’s there, there’s fungi everywhere: a case series utilizing rezafungin for invasive candidiasis. Infect Dis Ther. 2025;14(4):867-877.
DOI: 10.1007/s40121-025-01120-7
-
23.
Stack M.A., Ostrosky-Zeichner L. Rezafungin for suppressive therapy of Candida auris in a patient with a left ventricular assist device (LVAD). IDCases. 2025;40:e02214.
DOI: 10.1016/j.idcr.2025.e02214
-
24.
Vallabhaneni S., Kallen A., Tsay S., Chow N., Welsh R., Kerins J., et al. Investigation of the first seven reported cases of Candida auris, a globally emerging invasive, multidrugresistant fungus – United States, May 2013 – August 2016. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2016;65(44):1234-1237.
DOI: 10.15585/mmwr.mm6544e1
-
25.
Chen J., Tian S., Han X., Chu Y., Wang Q., Zhou B., Shang H. Is the superbug fungus really so scary? A systematic review and meta-analysis of global epidemiology and mortality of Candida auris. BMC Infect Dis. 2020;20(1):827.
DOI: 10.1186/s12879-020-05543-0
-
26.
Ong V., James A.K., Smith S., Flanagan S. Pharmacokinetics of the novel echinocandin CD101 in multiple animal species. Antimicrob Agents Chemother. 2017;61(7):e01626-16.
DOI: 10.1128/AAC.01626-16
-
27.
Centers for Disease Control and Prevention. Antifungal susceptibility testing for C. auris. Available at: www.cdc.gov/candida-auris/hcp/laboratories/antifungalsusceptibility-testing.html. Accessed June 16, 2026.
-
28.
Arendrup M.C., Guinea J., Arikan-Akdagli S., Meijer E.F.J., Meis J.F., Buil J.B., et al. How to interpret MICs of amphotericin B, echinocandins and flucytosine against Candida auris (Candidozyma auris) according to the newly established European Committee for Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) breakpoints. Clin Microbiol Infect. 2026;32(1):56-61.
DOI: 10.1016/j.cmi.2025.07.002
-
29.
Sharma D., Paul R.A., Rudramurthy S.M., Kashyap N., Bhattacharya S., Soman R., et al. Impact of FKS1 genotype on echinocandin in vitro susceptibility in Candida auris and in vivo response in a murine model of infection. Antimicrob Agents Chemother. 2022;66(1):e0165221.
DOI: 10.1128/AAC.01652-21
-
30.
Hirayama T., Miyazaki T., Sumiyoshi M., Ito Y., Ashizawa N., Takeda K., et al. Echinocandin resistance in Candida auris occurs in the murine gastrointestinal tract due to FKS1 mutations. Antimicrob Agents Chemother. 2023;67(4).
DOI: 10.1128/aac.01243-22
-
31.
Kiyohara M., Miyazaki T., Okamoto M., Hirayama T., Makimura K., Chibana H., et al. Evaluation of a novel FKS1 R1354H mutation associated with caspofungin resistance in Candida auris using the CRISPR-Cas9 system. J Fungi (Basel). 2023;9(5):529.
DOI: 10.3390/jof9050529
-
32.
Espinel-Ingroff A., Arendrup M.C., Pfaller M.A., Bonfietti L.X., Bustamante B., Canton E., et al. Interlaboratory variability of caspofungin MICs for Candida spp. using CLSI and EUCAST methods: should the clinical laboratory be testing this agent? Antimicrob Agents Chemother. 2013;57(12):5836-5842.
DOI: 10.1128/AAC.01519-13
-
33.
Pfaller M.A., Diekema D.J., Jones R.N., Castanheira M. Use of anidulafungin as a surrogate marker to predict susceptibility and resistance to caspofungin among 4,290 clinical isolates of Candida by using CLSI methods and interpretive criteria. J Clin Microbiol. 2014;52(9):3223-3229.
DOI: 10.1128/JCM.00782-14
-
34.
Hsu C., Yassin M. Diagnostic approaches for Candida auris: a comprehensive review of screening, identification, and susceptibility testing. Microorganisms. 2025;13(7):1461.
DOI: 10.3390/microorganisms13071461
-
35.
Sharma D., Paul A., Rudramurthy S., Kashyap N., Bhattacharya S., Soman R., et al. Impact of FKS1 genotype on echinocandin in vitro susceptibility in Candida auris and in vivo response in a murine model of infection. Antimicrob Agents Chemother. 2022;66(1):e01652-21.
DOI: 10.1128/AAC.01652-21