Аннотация
В горизонтальном переносе генов вирулентности у Staphylococcus aureus значительную роль играют бактериофаги семейства Siphoviridae. Так, фаги интегразной группы 3 переносят гены стафилокиназы (sak), ингибитора системы комплемента (scn), ингибитора хемотаксиса лейкоцитов (chp), энтеротоксинов А и Р (sea, sep). Перечисленные гены обеспечивают защиту бактерий от действия неспецифического иммунитета хозяина и объединяются в Immune Evasion Cluster — IEC (кластер уклонения от иммунитета). Распространение различных типов IEC, а также генов других факторов вирулентности (seb, lukSF, tsst) было изучено среди изолятов MRSA (n=231) и MSSA (n=60) различных agr групп. Комплекс IEC был выявлен у 99% S. aureus. Среди MRSA преобладали изоляты, относящиеся к agr I — 94% (218), среди них IEC типа D был выявлен у 65% (151); у 15% (35) изолятов выявлены F/A типы (sak, chp, scn, sea/sep), типы E и В, нетипируемые варианты выявлены у 13% (29). Проведённое полногеномное секвенирование изолята MRSA с типом D показало, что IEC локализован в интактном профаге (40 тыс. п.н.). Гены tsst были обнаружены у 7% (16) изолятов MRSA, генов lukSF и seb обнаружено не было. Среди MSSA, напротив, были выявлены изоляты, относящиеся к различным agr-группам, но преобладали agr I c элементами IEC следующих типов: E (18%, 11), B (25%, 15), D (13%, 8). MSSA, относящиеся к agr II, имели IEC A/F (8%, 5), IEC B (8%, 5). У 20% (12) был выявлен seb и у 5% (3) обнаружены гены lukSF, которые всегда были ассоциированы с IEC E типа. Не выявлено зависимости между принадлежностью стафилококков к различным agr группам и IEC-типам или наличием lukSF, seb и tsst.
-
1.
Watkins R.R., David M.Z, Salata R.A. Current concepts on the virulence mechanisms of meticillin-resistant Staphylococcus aureus. J Med Microbiol 2012; 61:1179- 93.
-
2.
Virulence factors of pathogenic bacteria database (VFDB). In: http://wwwmgcaccn/cgi-bin/VFs/compvfsc gi?Genus=Staphylococcus.
-
3.
Papageorgiou A.C., Acharya K.R. Microbial superantigens: from structure to function. Trends Microbiol 2000; 8(8):369-75.
-
4.
McCormick J.K., Yarwood J.M., Schlievert P.M. Toxic shock syndrome and bacterial superantigens: an update. Annu Rev Microbiol 2001; 55:77-104.
-
5.
Dinges M.M., Orwin P.M., Schlievert P.M. Exotoxins of Staphylococcus aureus. Clin Microbiol Rev 2000; 13(1):16-34.
-
6.
Lina G., Piemont Y., Godail-Gamot F., et al. Involvement of Panton-Valentine leukocidin-producing Staphylococcus aureus in primary skin infections and pneumonia. Clin Infect Dis 1999; 29(5):1128-32.
-
7.
Labandeira-Rey M., Couzon F., Boisset S., et al. Staphylococcus aureus Panton-Valentine leukocidin causes necrotizing pneumonia. Science 2007; 315(5815):1130-3.
-
8.
McCarthy A.J., Lindsay J.A. Staphylococcus aureus innate immune evasion is lineage-specific: a bioinfomatics study. Infect Genet Evol 2013; 19C:7-14.
-
9.
van Wamel W.J., Rooijakkers S.H., Ruyken M., van Kessel K.P., van Strijp J.A. The innate immune modulators staphylococcal complement inhibitor and chemotaxis inhibitory protein of Staphylococcus aureus are located on beta-hemolysin-converting bacteriophages. J Bacteriol 2006; 188(4):1310-5.
-
10.
Jin T., Bokarewa M., Foster T., Mitchell J., Higgins J., Tarkowski A. Staphylococcus aureus resists human defensins by production of staphylokinase, a novel bacterial evasion mechanism. J Immunol 2004; 172(2):1169-76.
-
11.
Ricklin D., Tzekou A., Garcia B.L., et al. A molecular insight into complement evasion by the staphylococcal complement inhibitor protein family. J Immunol 2009; 183(4):2565-74.
-
12.
de Haas C.J., Veldkamp K.E., Peschel A., et al. Chemotaxis inhibitory protein of Staphylococcus aureus, a bacterial antiinflammatory agent. J Exp Med 2004; 199(5):687-95.
-
13.
Canchaya C., Proux C., Fournous G., Bruttin A., Brussow H. Prophage genomics. Microbiol Mol Biol Rev 2003; 67(2):238-76.
-
14.
McCarthy A.J., Witney A.A., Lindsay J.A. Staphylococcus aureus temperate bacteriophage: carriage and horizontal gene transfer is lineage associated. Front Cell Infect Microbiol 2012; 2:6.
-
15.
Novick R.P. Autoinduction and signal transduction in the regulation of staphylococcal virulence. Mol Microbiol 2003; 48(6):1429-49.
-
16.
Francois P., Koessler T., Huyghe A., et al. Rapid Staphylococcus aureus agr type determination by a novel multiplex real-time quantitative PCR assay. J Clin Microbiol 2006; 44(5):1892-5.
-
17.
Goerke C,. Esser S., Kummel M., Wolz C. Staphylococcus aureus strain designation by agr and cap polymorphism typing and delineation of agr diversification by sequence analysis. Int J Med Microbiol 2005; 295(2):67-75.
-
18.
Collery M.M., Smyth D.S., Tumilty J.J., Twohig J.M., Smyth C.J. Associations between enterotoxin gene cluster types egc1, egc2 and egc3, agr types, enterotoxin and enterotoxin-like gene profiles, and molecular typing characteristics of human nasal carriage and animal isolates of Staphylococcus aureus. J Med Microbiol 2009, 58(Pt 1):13-25.
-
19.
Sakoulas G., Eliopoulos G.M., Moellering R.C., et al. Staphylococcus aureus accessory gene regulator (agr) group II: is there a relationship to the development of intermediate-level glycopeptide resistance? J Infect Dis 2003; 187(6):929-38.
-
20.
Gilot P., Lina G., Cochard T., Poutrel B. Analysis of the genetic variability of genes encoding the RNA IIIactivating components Agr and TRAP in a population of Staphylococcus aureus strains isolated from cows with mastitis. J Clin Microbiol 2002; 40(11):4060-7.
-
21.
Goerke C., Pantucek R., Holtfreter S., et al. Diversity of prophages in dominant Staphylococcus aureus clonal lineages. J Bacteriol 2009; 191(11):3462-8.
-
22.
Verkaik N.J., Benard M., Boelens H.A., et al. Immune evasion cluster-positive bacteriophages are highly prevalent among human Staphylococcus aureus strains, but they are not essential in the first stages of nasal colonization. Clin Microbiol Infect 2011; 17(3):343-8.
-
23.
Goering R.V., Shawar R.M., Scangarella N.E., et al: Molecular epidemiology of methicillin-resistant and methicillin-susceptible Staphylococcus aureus isolates from global clinical trials. J Clin Microbiol 2008; 46(9):2842-7.
-
24.
David M.Z., Daum R.S. Community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus: epidemiology and clinical consequences of an emerging epidemic. Clin Microbiol Rev 2010; 23(3):616-87.
-
25.
Rolo J., Miragaia M., Turlej-Rogacka A., et al. High genetic diversity among community-associated Staphylococcus aureus in Europe: results from a multicenter study. PLoS ONE 2012; 7(4):e34768.
-
26.
Li M., Diep B.A., Villaruz A.E., et al. Evolution of virulence in epidemic community-associated methicillinresistant Staphylococcus aureus. Proc Natl Acad Sci U S A 2009; 106(14):5883-8.
-
27.
Bogut A., Koziol-Montewka M., Baranowicz I., et al. Community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus (CA-MRSA) in Poland: further evidence for the changing epidemiology of MRSA. New Microbiol 2008; 31(2):229-34.
-
28.
Miklasevics E., Haeggman S., Balode A., et al. Report on the first PVL-positive community acquired MRSA strain in Latvia. Euro Surveill 2004; 9(11):29-30.
-
29.
Baranovich T., Potapov V., Yamamoto T. The first isolation of Panton-Valentine leukocidin (PVL) positive community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus (CA-MRSA) in Russia. Euro Surveill 2007; 12(3):E070315 070314.
-
30.
Baranovich T., Zaraket H., Shabana I.I., Nevzorova V., Turcutyuicov V., Suzuki H. Molecular characterization and susceptibility of methicillin-resistant and methicillinsusceptible Staphylococcus aureus isolates from hospitals and the community in Vladivostok, Russia. Clin Microbiol Infect 2010; 16(6):575-82.
-
31.
Kuehnert M.J., Kruszon-Moran D., Hill H.A., et al. Prevalence of Staphylococcus aureus nasal colonization in the United States, 2001-2002. J Infect Dis 2006; 193(2):172-9.
-
32.
Munckhof W.J., Nimmo G.R., Schooneveldt J.M., et al. Nasal carriage of Staphylococcus aureus, including community-associated methicillin-resistant strains, in Queensland adults. Clin Microbiol Infect 2009; 15(2):149-55.
-
33.
Severin J.A., Lestari E.S., Kuntaman K., et al: Unusually high prevalence of panton-valentine leukocidin genes among methicillin-sensitive Staphylococcus aureus strains carried in the Indonesian population. J Clin Microbiol 2008; 46(6):1989-95.